29
лет
предоставляем актуальную медицинскую информацию от ведущих специалистов, помогая врачам в ежедневной работе
Уведомления
29
лет
предоставляем актуальную медицинскую информацию от ведущих специалистов, помогая врачам в ежедневной работе
29
лет
предоставляем актуальную медицинскую информацию от ведущих специалистов, помогая врачам в ежедневной работе
Уведомления
Войдите или зарегистрируйтесь, чтобы получать уведомления
Пройдя регистрацию, вы сможете получать уведомления
о новых статьях сразу после их публикации на сайте
Оценка возможностей дооперационной неинвазивной диагностики диспластического невуса
1
ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России, Москва, Россия

Введение: диспластические меланоцитарные образования кожи ассоциированы с повышенным риском развития меланомы, а их своевременное выявление затруднено из-за ограниченной точности существующих визуальных доопер­ационных методов.

Цель исследования: сравнить эффективность и информативность двух неинвазивных методов диагностики кожи — эпилюминесцентной дерматоскопии (ЭД) и аутофлуоресцентной спектроскопии (АФС) в ранней диагностике диспластического невуса.

Материал и методы: под наблюдением находились 122 пациента, у которых исследовано 139 меланоцитарных новообразований кожи. Все новообразования исследовали посредством ЭД с использованием дерматоскопа Heine Delta 20 и расчетом дерматоскопического индекса TDS по модифицированной формуле ABCD. Те же образования изучали методом АФС с помощью лазерной электронно-спектральной установки, работающей в диапазоне 450–950 нм. Оценивали уровень и интенсивность аутофлуоресценции, коэффициент флуоресцентной контрастности, смещение пика флуоресценции и наличие дополнительных спектральных максимумов. После этого все образования удаляли хирургически с последующим патоморфологическим исследованием. Диагностическую эффективность методов оценивали по чувствительности, специфичности, точности, положительной прогностической ценности (PPV), отрицательной прогностической ценности (NPV) и ROC-анализу с расчетом AUC.

Результаты исследования: по данным гистологического исследования, дисплазия отсутствовала в 47 случаях, легкая/умеренная дисплазия выявлена в 42 случаях, тяжелая — в 50. При выявлении любой меланоцитарной дисплазии АФС показала чувствительность 100%, специфичность — 93,6%, точность — 97,8%, PPV — 96,8% и NPV — 100%. Для ЭД показатели составили: чувствительность — 69,6%, специфичность — 53,2%, точность — 64,0%, PPV — 74,4% и NPV — 47,2%. По данным ROC-анализа AUC для АФС составила 0,94, для ЭД — 0,64. При диагностике тяжелой дисплазии AUC также была выше у АФС — 0,76, у ЭД — 0,68. Дополнительные пики флуоресценции отмечались только при наличии доказанной дисплазии и чаще регистрировались при тяжелой дисплазии.

Заключение: диагностическая эффективность АФС показала лучшие результаты по сравнению с ЭД при неинвазивной оценке меланоцитарных новообразований кожи, особенно при выявлении любой степени дисплазии. Метод может рассматриваться как пер­спективный компонент комплексной ранней диагностики диспластических невусов.

Ключевые слова: меланоцитарная дисплазия, атипичные меланоцитарные новообразования кожи, аутофлуоресцентная диагностика, эпилюминисцентная дерматоскопия.


Assessment of prospects of preoperative noninvasive diagnosis of dysplastic nevi

E.A. Krokhmaleva, Yu.N. Perlamutrov, D.E. Klyuchnikova, A.A. Akopyan

Russian University of Medicine, Moscow, Russian Federation

Background: dysplastic melanocytic lesions are associated with an increased risk of melanoma while their timely identification remains challenging due to the limited accuracy of currently available visual pre-surgical techniques.

Aim: to compare performance and efficacy of two non-invasive skin imaging methods (i. e., epiluminescence dermoscopy (ED) and autofluorescence spectroscopy (AFS])) for the early detection of dysplastic nevi.

Materials and Methods: the study included 122 patients with a total of 139 melanocytic lesions. All the lesions were examined by ED using a Heine Delta 20 dermatoscope, and Total Dermoscopy Score (TDS) was calculated by the modified ABCD rule. The same lesions were also assessed by AFS using a laser spectrum analyzer at 450–950 nm. Autofluorescence level and intensity, fluorescence contrast ratio, fluorescence peak shift, and additional spectral peaks were evaluated. All lesions were subsequently excised and subjected to a pathomorphological examination. Diagnostic performance was assessed by sensitivity, specificity, accuracy, positive predictive value (PPV), negative predictive value (NPV), and ROC analysis with AUC calculation.

Results: the histopathological examination revealed no dysplasia (n=47), mild or moderate dysplasia (n=42), and severe dysplasia (n=50). To detect melanocytic dysplasia, regardless of grade, AFS demonstrated good sensitivity (100%), specificity (93.6%), accuracy (97.8%), PPV (96.8%), and NPV (100%). As for ED, sensitivity, specificity, accuracy, PPV and NPV were 69.6%, 53.2%, 64.0%, 74.4% and 47.2%, respectively. According to the ROC analysis, AUC were 0.94 and 0.64 for AFS and ED, respectively. To diagnose severe dysplasia, AFS also showed better AUC (0.76) than ED (0.68). Additional fluorescence peaks were reported only in patients with verified dysplasia, and they were more common in those with severe dysplasia.

Conclusion: AFS demonstrated higher diagnostic performance than ED in the non-invasive assessment of melanocytic lesions (especially, to detect melanocytic dysplasia of any grade). The method may be considered as a valuable component of a comprehensive early diagnosis of dysplastic nevi.

Keywords: melanocytic dysplasia, atypical melanocytic skin neoplasms, autofluorescence diagnostics, epiluminescence dermoscopy.

For citation: Krokhmaleva E.A., Perlamutrov Yu.N., Klyuchnikova D.E., Akopyan A.A. Assessment of prospects of preoperative noninvasive diagnosis of dysplastic nevi. Russian Medical Inquiry. 2026;10(6):338–343 (in Russ.). DOI: 10.32364/2587-6821-2026-10-6-1

Для цитирования: Крохмалева Е.А., Перламутров Ю.Н., Ключникова Д.Е., Акопян А.А. Оценка возможностей дооперационной неинвазивной диагностики диспластического невуса. РМЖ. Медицинское обозрение. 2026;10(6):338-343. DOI: 10.32364/2587-6821-2026-10-6-1.

Введение

Диспластические меланоцитарные образования кожи ассоциируются с повышенным риском развития меланомы кожи. Своевременная диагностика меланоцитарной дисплазии (МД) остается сложной задачей из-за недостаточной точности существующих визуальных методов доопе-р­ационной оценки, что подтверждают современные данные литературы [1, 2]. Распространенность МД среди популяции достигает 32% [3], что подчеркивает важность данного вопроса. Трудности диагностики диспластического невуса вызваны недостаточно высокой чувствительностью и специфичностью инструментальных методов исследования, а также существенной зависимостью от опыта и квалификации специалиста [4].

Эпилюминесцентная дерматоскопия (ЭД) на текущий момент стала «золотым стандарт­ом» для визуальной оценки пигментных образований. Широко используемые балльные шкалы (ABCD, анализ паттернов, алгоритм Argenziano, 11-балльная шкала Menzies и др.) [5, 6] хорошо зарекомендовали себя в дифференцировке невусов и меланомы. Однако анализ литературы указывает на случаи низкой достоверности диагностики именно диспластического невуса при ЭД и высокий процент ошибок, что связано с субъективными параметрами, в том числе опытом специалиста [7–9]. В систематическом обзоре, включающем 51 исследование [10], было отмечено, что чувствительность и специфичность метода ABCD составляет 85 и 72% соответственно, а чувствительность и специфичность 7-балльного алгоритма — 77 и 80% соответственно. По данным А. Blum et al. [11], модифицированные алгоритмы EDA и MDA классифицируют злокачественное меланоцитарное образование от доброкачественного в 90,4 и 92,5% случаев соответственно. В обсервационном исследовании Аssessment and management of melanoma1 дерматоскопия оказалась менее чувствительной, чем конфокальная лазерная микроскопия, в связи с большим числом ложноотрицательных результатов. Важно отметить, что эти исследования демонстрируют эффективность ЭД в диагностике меланомы, чувствительность же этих методов при работе с начальными, пограничными диспластическими изменениями заметно снижается [11].

Несомненно, усовершенствованная дерматоскопия в сочетании с цифровой, компьютерной обработкой и возможностью телетрансляции данных с целью коллегиального их анализа позволяет повысить чувствительность клинического обследования кожи до 98%, а специфичность — до 95% [12, 13], однако подобные технологии дорогостоящи и малопригодны для скрининговых программ. Одним из недостатков ЭД является отсутствие возможности различать патологические изменения в клеточных структурах, являющиеся одним из важных признаков для диагностики МД.

В связи с этим все больший интерес вызывает метод аутофлуоресцентной спектроскопии (АФС). Уже доказана его эффективность в ранней диагностике неоплазий слизистых, диспластических процессов и опухолей разной локализации [14–18]. Принцип метода основан на регистрации уникальных спектральных различий в излучении нормальной и патологической ткани (диапазон 450–950 нм), возникающем под лазерным воздействием определенной длины волны [13, 16–18]. В процессе анализа оцениваются спектральные сдвиги (>5 нм), появление добавочных максимумов флуоресценции, соотношение интенсивности свечения «синих» и «красных» участков спектра (флуоресцентная контрастность) [23–25]. Изменения этих параметров четко отражают активность пролиферации и глубину диспластических отклонений [23–25]. Большое количество исследований продемонстрировали высокую диагностическую ценность АФС в выявлении ранних изменений при разных видах рака [19–22], что и послужило основой для сравнительного анализа с ЭД — стандарт­ным неинвазивным методом для ранней диагностики МД невусов.

Цель исследования: сравнить эффективность и информативность двух методов неинвазивной диагностики кожи — ЭД и АФС в ранней диагностике диспластического невуса.

Материал и методы

В исследовании участвовали 122 пациента, у которых было изучено 139 меланоцитарных новообразований кожи. Возраст пациентов варьировал от 22 до 78 лет, средний возраст составил 43,8±6,4 года, мужчин было 55 (45,1%), женщин — 67 (54,9%).

Критерии включения: пациенты с меланоцитарными новообразованиями кожи, требующими диагностики и определения лечебной тактики, достигшие возраста 18 лет на момент предоставления информированного согласия. Критерии невключения: пациенты с локализацией меланоцитарных новообразований кожи на голове и шее, имеющие системные заболевания соединительной ткани, другие тяжелые соматические заболевания, в анамнезе или в настоящее время пер­енесшие онкологические заболевания, трансплантацию органов, принимающие антиретровирусную терапию или цитостатические препараты, пациенты с психическими заболеваниями, лица, злоупотребляющие алкоголем, имеющие наркозависимость, беременные или кормящие грудью.

Исследование соответствует этическим принципам Хельсинкской декларации. На данное исследование получено разрешение межвузовского этического комитета ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России.

Все новообразования исследовали методом традиционной ЭД с использованием поляризационного дерматоскопа Heine Delta 20 (Германия) с 10-кратным увеличением. Оценку проводили по модифицированной формуле ABCD с расчетом общего дерматоскопического индекса TDS:

TDS = (A × 1,3) + (B × 0,1) + (C × 0,5) + (D × 0,5),

где учитывались асимметрия, четкость границ, цветовые характеристики и дерматоскопические структуры образования [26, 27].

Те же новообразования подвергали АФС с использованием спектрального анализатора «ЛЭСА-01-БИОСПЕК». Спектры регистрировали в диапазоне 450–950 нм с шагом 10 нм. Оценивали уровень и интенсивность аутофлуоресценции, коэффициент флуоресцентной контрастности и смещение пика флуоресценции. Признаками МД считали повышение уровня аутофлуоресценции ≥0,71±0,05 усл. ед., смещение пика флуоресценции на ≥5 нм от пороговых значений, повышение коэффициента флуоресцентной контрастности ≥1,45 и увеличение интенсивности аутофлуоресценции более чем на 45% от порогового уровня [28].

После инструментального обследования все пигментные образования удаляли хирургическим путем с последующим патоморфологическим исследованием. Диспластическими считали меланоцитарные ново-образования при наличии цитологической атипии в сочетании со структурными изменениями стромы и/или архитектоники, включая внутриэпидермальную лентигинозную гипер­плазию меланоцитов, ламеллярную и концентрическую фиброплазию, а также архитектурную атипию [29, 30].

Диагностическую эффективность ЭД и АФС оценивали по чувствительности, специфичности, точности, положительной (PPV) и отрицательной (NPV) прогностической ценности с использованием точного метода Клоппер­а — Пирсона. ROC-анализ выполняли отдельно для всех случаев МД и для тяжелой дисплазии; интегральным показателем служила площадь под ROC-кривой (AUC). Оценивали дополнительные пики флуоресценции.

Результаты исследования

Гистологическая характеристика исследованных образований включала патоморфологическое описание 139 удаленных меланоцитарных образований кожи.

По данным патоморфологического исследования, в 47 случаях признаки МД отсутствовали (группа I). Морфологическая карт­ина в этой группе соответствовала типичным невусам с сохраненной архитектоникой и без признаков диспластических изменений.

Легкая/умеренная МД была диагностирована в 42 случаях (группа II).

Еще в 50 наблюдениях установлена тяжелая МД (группа III). Для нее были характерны: пролиферация меланоцитов, увеличение ядерно-цитоплазматического соотношения, гипер­хромия ядер, единичные митотические фигуры и лимфоцитарная инфильтрация.

Эпилюминесцентная дерматоскопия

В работе дерматоскопический индекс TDS использовали как количественный показатель для сопоставления визуальных признаков с результатами гистологического исследования. С учетом задач исследования были приняты следующие условные интервалы: TDS <4,1 — более характерен для отсутствия дисплазии; 4,1–4,75 — для легкой/умеренной дисплазии; >4,75 — для тяжелой дисплазии.

По данным ЭД, 53 (38,1%) образования были отнесены к категории TDS <4,1, 49 (35,3%) — к интервалу 4,1–4,75, 37 (26,6%) — к категории TDS >4,75. Значения >5,45 не регистрировались, поскольку являлись критерием невключения в исследование.

При сопоставлении дерматоскопических и гистологических данных установлено, что в группе без признаков дисплазии (n=47) показатель TDS <4,1 имели 25 (53,2%) образований, TDS в диапазоне 4,1–4,75 — 12 (25,5%), а TDS >4,75 — 10 (21,3%).

Среди новообразований с легкой/умеренной дисплазией (n=42) значения TDS <4,1 выявлены в 19 (45,2%) случаях, TDS в диапазоне 4,1–4,75 — в 16 (38,1%), а TDS >4,75 — в 7 (16,7%).

В группе тяжелой дисплазии (n=50) показатель TDS <4,1 зарегистрирован у 9 (18%) образований, в диапазоне 4,1–4,75 — у 21 (42,0%), а TDS >4,75 — у 20 (40,0%).

Аутофлуоресцентная спектроскопия

Оценку проводили с использованием следующих пороговых значений: уровень аутофлуоресценции ≤0,55 усл. ед. соответствовал отсутствию дисплазии, 0,56–0,71 усл. ед. — легкой/умеренной дисплазии, ≥0,72 усл. ед. — тяжелой дисплазии. По результатам АФС все меланоцитарные образования кожи были разделены на 3 группы.

В группе I (без признаков дисплазии) (n=44) уровень аутофлуоресценции не превышал 0,55±0,05 усл. ед., средняя интенсивность составила 3,3 усл. ед., коэффициент флуоресцентной контрастности — 1,02. Смещения пика флуоресценции и дополнительных спектральных максимумов не отмечалось.

В группе II (легкой/умеренной дисплазии) (n=46) средний уровень аутофлуоресценции составил 0,71±0,05 усл. ед., интенсивность — 4,73±0,05 усл. ед., коэффициент контрастности — 1,45. Смещение пика флуоресценции более чем на 5 нм в длинноволновую область зарегистрировано в 91,3% случаев. Дополнительные пики выявлены у 6 (13,0%) образований.

В группе III (тяжелой дисплазии) (n=49) уровень аутофлуоресценции достигал 0,89±0,05 усл. ед., интенсивность — 5,93±0,05 усл. ед., коэффициент контрастности — 1,82. Смещение пика флуоресценции не менее чем на 5 нм выявлено в 63,3% случаев, в том числе не менее чем на 7 нм — в 36,7%. Дополнительные пики регистрировались в 37 (75,5%) наблюдениях.

Таким образом, по мере нарастания степени дисплазии отмечалось увеличение уровня и интенсивности аутофлуоресценции, коэффициента флуоресцентной контрастности, частоты смещения пика и появления дополнительных спектральных максимумов.

Сопоставление аутофлуоресцентных данных с результатами гистологического исследования

Среди 47 образований без гистологических признаков дисплазии уровень аутофлуоресценции ≤0,55 усл. ед. был зарегистрирован в 44 (93,6%) случаях, тогда как у 3 (6,4%) образований показатель составлял ≥0,72 усл. ед.

Среди 42 образований с легкой/умеренной меланоцитарной дисплазией у 24 (57,1%) уровень аутофлуоресценции находился в диапазоне 0,56–0,71 усл. ед., а у 18 (42,9%) составлял ≥0,72 усл. ед.

В группе III из 50 образований с тяжелой МД в 28 (56,0%) случаях уровень аутофлуоресценции составлял ≥0,72 усл. ед., а в 22 (44,0%) наблюдениях находился в диапазоне 0,56–0,71 усл. ед. Ни в одном случае тяжелой дисплазии не было зарегистрировано значений ≤0,55 усл. ед.

Диагностическая эффективность методов при выявлении любой МД

Для оценки диагностической эффективности при выявлении любой МД положительным гистологическим исходом считали наличие как легкой/умеренной, так и тяжелой дисплазии, отрицательным — отсутствие дисплазии.

Для АФС положительным тестом считали уровень >0,55 усл. ед. В этом случае были получены следующие показатели: TP (True Positive) — истинно положительный=92, FN (False Negative) — ложноотрицательный=0, TN (True Negative) — истинно отрицательный=44, FP (False Positive) — ложноположительный=3.

Для ЭД положительным считался результат при TDS ≥4,1. Соответствующие показатели составили: TP=64, FN=28, TN=25, FP=22.

На основании этих данных чувствительность АФС составила 100% (92/92), специфичность — 93,6% (44/47), точность — 97,8% (136/139), PPV — 96,8% (92/95), NPV — 100% (44/44).

Для ЭД чувствительность составила 69,6% (64/92), спе-цифичность — 53,2% (25/47), точность — 64,0% (89/139), PPV — 74,4% (64/86), NPV — 47,2% (25/53).

Диагностическая эффективность методов при выявлении тяжелой МД

В анализе тяжелой дисплазии положительным гистологическим исходом считали наличие тяжелой МД (n=50), а отрицательным — отсутствие тяжелой дисплазии, то есть объединенную группу «дисплазия не выявлена + легкая/умеренная дисплазия» (n=89).

Для АФС положительным тестом считали уровень ≥0,72 усл. ед. В этой модели были получены показатели: TP=28, FN=22, TN=68, FP=21.

Для ЭД положительным тестом считали значение TDS >4,75. Соответствующие показатели составили: TP=20, FN=30, TN=72, FP=17.

На основании этих данных для АФС чувствительность составила 56,0% (28/50), специфичность — 76,4% (68/89), точность — 69,1% (96/139), PPV — 57,1% (28/49), NPV — 75,6% (68/90).

Для ЭД чувствительность составила 40,0% (20/50), спе-цифичность — 80,9% (72/89), точность — 66,2% (92/139), PPV — 54,1% (20/37), NPV — 70,2% (72/102).

ROC-анализ

Для сравнительной оценки дискриминационной способности АФС и ЭД использовали ROC-анализ с вычислением AUC. Анализ выполняли на основании непрерывных значений уровня аутофлуоресценции и дерматоскопического индекса без предварительной категоризации, что позволяло оценить полную диагностическую способность каждого метода.

ROC-анализ при выявлении любой МД

При объединении случаев легкой/умеренной и тяжелой дисплазии в одну группу положительного исхода АФС продемонстрировала более высокую диагностическую эффективность по сравнению с ЭД. Площадь под ROC-кривой для АФС составила 0,94, тогда как для ЭД — 0,64 (рис. 1 А).

Рис. 1. ROC-кривые АФС и ЭД: А — для любой МД, В — для тяжелой МД Fig. 1. ROC curves of AFS and ED: A — for any MD, B — for severe MD

ROC-анализ при выявлении тяжелой МД

При анализе тяжелой дисплазии АФС также превосходила ЭД. Значение AUC для АФС составило 0,76, а для ЭД — 0,68 (рис. 1 В).

Дополнительные пики флуоресценции

У части исследованных меланоцитарных новообразований были выявлены дополнительные пики флуоресценции. Частота их регистрации возрастала по мере увеличения степени диспластических изменений.

В группе образований без признаков дисплазии по результатам патоморфологического исследования дополнительные пики не были зарегистрированы ни в одном случае. При легкой/умеренной дисплазии они выявлялись в 14,3% наблюдений, то есть в 6 из 42 случаев. Наиболее высокая частота была характерна для тяжелой дисплазии, при которой дополнительный пик определялся у 37 из 50 образований, что составило 74,0% (рис. 2).

Рис. 2. Распределение меланоцитарных образований кожи по группам гистологического заключения в зависи- мости от наличия или отсутствия дополнительного пика флуоресценции Fig. 2. Distribution of melanocytic lesions by groups of a histopathology report depe

Критерий «наличие дополнительного пика флуоресценции» характеризовался специфичностью 96,2% и положительной прогностической ценностью, приближающейся к 100% при выявлении любой степени дисплазии. Отношение шансов (OR) составило 50,6 при p<0,001.

Спектральный анализ показал, что пики в диапазоне 770–850 нм регистрировались исключительно при тяжелой дисплазии — в 25 из 37 случаев с дополнительными пиками. В группе легкой/умеренной дисплазии данный спектральный диапазон не встречался. Пики на длине волны 685 нм были характерны преимущественно для легкой/умеренной дисплазии и выявлялись во всех 6 из 6 соответствующих случаев. Пики на длине волны менее 770 нм были зарегистрированы только в случаях тяжелой дисплазии.

Обсуждение

Своевременная диагностика диспластического невуса является актуальной задачей, поскольку это способствует профилактике и раннему выявлению меланомы и, как следствие, снижению смертности от данного заболевания. Полученные результаты подтверждают, что морфологическая верификация остается основой диагностики меланоцитарных образований кожи, поскольку именно гистологическое исследование позволяет надежно разграничить отсутствие дисплазии, ее умеренные формы и тяжелую клеточную атипию. Вместе с тем практическая значимость работы связана со сравнением двух неинвазивных методов — ЭД и АФС.

Дерматоскопия в настоящем исследовании сохранила значение метода пер­вичной визуальной оценки, однако ее возможности в разграничении степеней дисплазии оказались ограниченными. Это связано с выраженным пер­екрытием значений TDS между морфологическими группами, что снижало разделительную способность метода и приводило к ложноположительным и ложноотрицательным результатам.

Аутофлуоресцентная спектроскопия продемонстрировала более четкую связь спектральных характеристик с морфологической степенью дисплазии. По мере нарастания клеточной атипии увеличивались уровень и интенсивность аутофлуоресценции, частота смещения спектральных максимумов и появления дополнительных пиков. При выявлении любой МД АФС показала наилучшие результаты: чувствительность и NPV составили 100%, что особенно важно для скрининговых задач. Дерматоскопия по этим показателям уступала.

При диагностике тяжелой дисплазии различия между методами по фиксированным порогам были менее выраженными, однако ROC-анализ подтвердил преимущество АФС по общей дискриминационной способности (AUC 0,76 против 0,68).

Особый интерес представляет анализ дополнительных пиков флуоресценции: их наличие было тесно связано со степенью дисплазии и характеризовалось высокой специфичностью. Это позволяет рассматривать данный признак как потенциальный маркер морфологической атипии.

Ограничением исследования является то, что использованные пороговые значения были сформированы в рамках конкретной выборки и требуют дальнейшей валидации.

Заключение

Аутофлуоресцентная спектроскопия обладает более высокой диагностической эффективностью по сравнению с ЭД при неинвазивной оценке меланоцитарных образований кожи. Наибольшее преимущество метода отмечено при выявлении любой МД — АФС продемонстрировала 100% чувствительность и 100% отрицательную прогностическую ценность при пороге аутофлуоресценции >0,55 усл. ед.

Спектральные характеристики аутофлуоресценции, включая дополнительные пики, связаны со степенью морфологической атипии, что расширяет возможности метода не только для скрининга, но и для стратификации риска. АФС может рассматриваться как пер­спективный компонент комплексного диагностического алгоритма, дополняющий клинический осмотр, дерматоскопию и гистологическую верификацию.


Сведения об авторах:

Крохмалева Елизавета Андреевна — старший лаборант кафедры кожных и венерических болезней ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России; 127006, Россия, г. Москва, ул. Долгоруковская, д. 4; ORCID iD 0000-0003-3724-8168

Пер­ламутров Юрий Николаевич — д.м.н., профессор, заслуженный врач России, заведующий кафедрой кожных и венерических болезней ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России; 127006, Россия, г. Москва, ул. Долгоруковская, д. 4; ORCID iD 0000-0002-4837-8489

Ключникова Дина Евгеньевна — к.м.н., ассистент кафедры кожных и венерических болезней ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России; 127006, Россия, г. Москва, ул. Долгоруковская, д. 4; ORCID iD 0000-0001-6595-1825

Акопян Арт­ашес Арамович — к.м.н., доцент кафедры госпитальной хирургии ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России; 127006, Россия, г. Москва, ул. Долгоруковская, д. 4; ORCID iD 0000-0003-0083-0314

Контактная информация: Крохмалева Елизавета Андреевна, е-mail: liza_kroxa@bk.ru

Прозрачность финансовой деятельности: никто из авторов не имеет финансовой заинтересованности в представленных материалах или методах.

Конфликт интересов отсутствует.

Статья поступила 25.05.2026.

Поступила после рецензирования 15.06.2026.

Принята в печать 30.06.2026.

About the authors:

Elizaveta A. Krokhmaleva — Senior Department Assistant at the Department of Skin and Venereal Diseases, Russian University of Medicine; 4, Dolgorukovskaya str., Moscow, 127006, Russian Federation; ORCID iD 0000-0003-3724-8168

Yuryi N. Perlamutrov — Dr. Sc. (Med.), Professor, Distinguished Doctor of Russia, Head of the Department of Skin and Venereal Diseases, Russian University of Medicine; 4, Dolgorukovskaya str., Moscow, 127006, Russian Federation; ORCID iD 0000-0002-4837-8489

Dina E. Klyuchnikova — C. Sc. (Med.), teaching assistant at the Department of Skin and Venereal Diseases, Russian University of Medicine; 4, Dolgorukovskaya str., Moscow, 127006, Russian Federation; ORCID iD 0000-0001-6595-1825

Artashes A. Akopyan — C. Sc. (Med.), Assistant Professor of the Department of Hospital Surgery, Russian University of Medicine; 4, Dolgorukovskaya str., Moscow, 127006, Russian Federation; ORCID iD 0000-0003-0083-0314

Contact information: Elizaveta A. Krokhmaleva, e-mail: liza_kroxa@bk.ru

Financial Disclosure: no authors have a financial or property interest in any material or method mentioned.

There is no conflict of interest.

Received 25.05.2026.

Revised 15.06.2026.

Accepted 30.06.2026.


1NICE (National Institute for Health and Care Excellence). Melanoma: assessment and management. 2022. (Electronic resource.) URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK588624/pdf/Bookshelf_NBK588624.pdf (access date: 12.20.2025).

 





1. Witt C., Krengel S. Clinical and epidemiological aspects of subtypes of melanocytic nevi (Flat nevi, Miescher nevi, Unna nevi). Dermatol Online J. 2010;16(1):1.
2. Романова О.А., Арт­емьева Н.Г., Солохина М.Г. и др. Клинико-морфологические параллели в диагностике прогрессирующего диспластического невуса и ранней меланомы кожи. Онкология. 2019;1:26–31. DOI: 10.17116/onkolog2019801126. Romanova O.A., Artem'eva N.G., Solochina M.G. et al. Clinical and morphological parallels in the diagnosis of progressive dysplastic nevus and early melanoma. Journal of Oncology. 2019;8(1):26–31 (in Russ.). DOI: 10.17116/onkolog2019801126
3. Piepkorn M.W., Barnhill R.L., Cannon-Albright L.A. et al. A multiobserver, population-based analysis of histologic dysplasia in melanocytic nevi. J Am Acad Dermatol. 1994;30:707–714. DOI: 10.1016/s0190-9622(08)81499-5
4. Kittler H., Pehamberger H., Wolff K., Binder M. Diagnostic accuracy of dermoscopy. The Lancet Oncology. 2002;3(3):159–165. DOI: 10.1016/S1470-2045(02)00679-4
5. Pehamberger H., Steiner A., Wolff K. In vivo epiluminescence microscopy of pigmented skin lesions. I. Pattern analysis of pigmented skin lesions. J Am Acad Dermatol. 1987;17(4):571–583. DOI: 10.1016/s0190-9622(87)70239-4
6. Argenziano G., Cerroni L., Zalaudek I. et al. Accuracy in melanoma detection: a 10-year multicenter survey. J Am Acad Dermatol. 2012;67(1):54–59. DOI: 10.1016/j.jaad.2011.07.019
7. Perrinaud A., Gaide O., French L.E. et al. Can automated dermoscopy image analysis instruments provide added benefit for the dermatologist? A study comparing the results of three systems. Br J Dermatol. 2007;157(5):926–933. DOI: 10.1111/j.1365-2133.2007.08168.x
8. Романова О.А., Арт­емьева Н.Г., Сотникова Ю.А. Выявление прогрессирующего диспластического невуса врачом пер­вичного звена — путь к профилактике и ранней диагностике меланомы кожи. Врач. 2020;12:37–40. DOI: 10.29296/25877305-2020-12-08. Romanova O.A., Artemyeva N.G., Sotnikova Yu.A. Detection of a Progressive Dysplastic Nevus by a Primary Care Physician: The Way to the Prevention and Early Diagnosis of Cutaneous Melanoma. Vrach. 2020;12:37–40 (in Russ.). DOI: 10.29296/25877305-2020-12-08
9. Blum A., Hofmann-Wellenhof R., Luedtke H. et al. Value of the clinical history for different users of dermoscopy compared with results of digital image analysis. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2004;18:665–669. DOI: 10.1111/j.1468-3083.2004.01044.x
10. Harrington E., Clyne B., Wesseling N. et al. Diagnosing malignant melanoma in ambulatory care: a systematic review of clinical prediction rules. BMJ Open. 2017;7(3):e014096. DOI: 10.1136/bmjopen-2016-014096
11. Blum A., Clemens J., Argenziano G. Modified dermoscopic algorithm for the differentiation between melanocytic and nonmelanocytic skin tumors. J Cutan Med Surg. 2006;10:73–78. DOI: 10.2310/7750.2006.00021
12. Huerta-Brogeras M., Olmos O., Borbujo J. et al. Validation of dermoscopy as a real-time noninvasive diagnostic imaging technique for actinic keratosis. Arch Dermatol. 2012;148(10):1159–1164. DOI: 10.1001/archdermatol.2012.1060
13. Папаян Г.В., Петрищев Н.Н., Ким С.В. и др. Возможности мультиспектральной аутофлуоресцентной визуализации злокачественных опухолей. Фотодинамическая терапия и фотодиагностика. 2014;3(4):3–12. Papayan G.V., Petrishchev N.N., Kim S.V. et al. Applications of multispectral autofluorescence imaging of malignant tumors. Photodynamic therapy and photodyagnosis. 2014;3(4):3–12 (in Russ.).
14. Monici M. Cell and tissue autofluorescence research and diagnostic applications. Biotechnol Annu Rev. 2005;11.227–256. DOI: 10.1016/s1387-2656(05)11007-2
15. Schmitz-Valckenberg S., Bültmann S., Dreyhaupt J. et al. Fundus autofluorescence and fundus perimetry in the junctional zone of geographic atrophy in patients with age-related macular degeneration. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2004;45(12):4470–4476. DOI: 10.1167/iovs.03-1311
16. Miranda-Lorenzo I., Dorado J., Lonardo E. et al. Intracellular autofluorescence: a biomarker for epithelial cancer stem cells. Nat Methods. 2014;11(11):1161–1169. DOI: 10.1038/nmeth.3112
17. Boudreault K.A., Schuerch K., Zhao J. et al. Quantitative autofluorescence intensities in acute zonal occult outer retinopathy vs healthy eyes. JAMA Ophthalmol. 2017;135(12):1330–1338. DOI: 10.1001/jamaophthalmol.2017.4499
18. Squires M.H., Shirley L.A., Shen C. et al. Intraoperative autofluorescence parathyroid identification in patients with multiple endocrine neoplasia type 1. JAMA Otolaryngol Head Neck Surg. 2019;145(10):897–902. DOI: 10.1001/jamaoto.2019
19. Moriichi K., Fujiya M., Okumura T. The efficacy of autofluorescence imaging in the diagnosis of colorectal diseases. Clin J Gastroenterol. 2016;9(4):175–183. DOI: 10.1007/s12328-016-0658-3
20. Груша Я.О., Кирющенкова Н.П., Новиков И.А. и др. Гистологическая верификация аутофлуоресцентных границ новообразований кожи пер­иорбитальной области. Вестник офтальмологии. 2020;136(6):32–41. DOI: 10.17116/oftalma202013606132. Grusha Y.O., Kiryushchenkova N.P., Novikov I.A. et al. Histological verification of autofluorescence borders of periorbital skin tumors. Russian Annals of Ophthalmology. 2020;136(6):32–41 (in Russ.). DOI: 10.17116/oftalma202013606132
21. Latos W., Sieroń A., Cieślar G. The benefits of targeted endoscopic biopsy performed using the autofluorescence based diagnostic technique in 67 cases of diagnostically difficult gastrointestinal tumors. Photodiagnosis Photodyn Ther. 2018;23:63–67.
22. Janssen J. Autofluorescence thoracoscopy in pleural disease: does it have clinical relevance? Expert Rev Respir Med. 2014;8(5):523–525. DOI: 10.1586/17476348.2014.923310
23. Папаян Г.В., Петрищев Н.Н., Панченко А.В. и др. Мультиспектральная аутофлюоресцентная диагностика рака шейки матки на экспер­иментальных моделях. В кн.: Сборник научных трудов «Фотодинамическая терапия и флуоресцентная диагностика». Под ред. Н.Н. Петрищева. СПб.: Лань; 2011:273–281. Papayan G.V., Petrishchev N.N., Panchenko A.V. et al. Multispectral autofluorescence diagnosis of cervical cancer in experimental models. In: Collection of scientific papers "Photodynamic therapy and fluorescence diagnostics" Petrishchev N.N., ed. SPb.: Lan; 2011:273–281 (in Russ.).
24. Meng J.W., Wang X.-J., Lin T. et al. The study of protoporphyrin IX metabolism in cell proliferation using photoluminescence method. J Lumin. 1999;83–84:271–273. DOI: 10.1016/S0022-2313(99)00110-6
25. Smits T., Robles C.A., van Erp P.E. et al. Correlation between macroscopic fluorescence and protoporphyrin IX content in psoriasis and actinic keratosis following application of aminolevulinic acid. J Invest Dermatol. 2005;125:4:833–839. DOI: 10.1111/j.0022-202X.2005.23843.x
26. Friedman R.J., Farber M.J., Warycha M.A. et al. The "dysplastic" nevus. Clinics in Dermatology. 2009;27(1):103–115. DOI: 10.1016/j.clindermatol.2008.09.008
27. Baigrie D., Tanner L.S. Dysplastic Nevi. 2022 Oct 24. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2026. PMID: 29489189.
28. Крохмалева Е.А., Пер­ламутров Ю.Н., Ольховская К.Б., Акопян А.А. Возможности мультиспектральной фотометрии в диагностике атипичных меланоцитарных новообразований кожи. Эффективная фармакотерапия. 2022;18(25):16–20. DOI: 10.33978/230 7-3586-2022-18-25-16-20. Krokhmaleva E.A., Perlamutrov Yu.N., Olkhovskaya K.B., Akopyan A.A. The Possibilities of Multispectral Photometry in the Diagnosis of Atypical. Melanocytic Skin Neoplasms. Effektivnaya farmakoterapiya. 2022;18(25):16–20 (in Russ.). DOI: 10.33978/230 7-3586-2022-18-25-16-20
29. NIH Consensus conference. Diagnosis and treatment of early melanoma. JAMA. 1992;268(10):1314–1319. DOI: 10.1001/jama.1992.03490100112037
30. Landman G. Atypical (dysplastic) cell nevus: histopathology and historical aspects. Acta Oncol Bras. 2003;23:514–520.
Лицензия Creative Commons
Контент доступен под лицензией Creative Commons «Attribution» («Атрибуция») 4.0 Всемирная.
Новости/Конференции
Все новости
Новости/Конференции
Все новости
Ближайшие конференции
Все мероприятия

Данный информационный сайт предназначен исключительно для медицинских, фармацевтических и иных работников системы здравоохранения.
Вся информация сайта www.rmj.ru (далее — Информация) может быть доступна исключительно для специалистов системы здравоохранения. В связи с этим для доступа к такой Информации от Вас требуется подтверждение Вашего статуса и факта наличия у Вас профессионального медицинского образования, а также того, что Вы являетесь действующим медицинским, фармацевтическим работником или иным соответствующим профессионалом, обладающим соответствующими знаниями и навыками в области медицины, фармацевтики, диагностики и здравоохранения РФ. Информация, содержащаяся на настоящем сайте, предназначена исключительно для ознакомления, носит научно-информационный характер и не должна расцениваться в качестве Информации рекламного характера для широкого круга лиц.

Информация не должна быть использована для замены непосредственной консультации с врачом и для принятия решения о применении продукции самостоятельно.

На основании вышесказанного, пожалуйста, подтвердите, что Вы являетесь действующим медицинским или фармацевтическим работником, либо иным работником системы здравоохранения.

Мы используем файлы cookie для организации работы сайта и повышения качества предоставляемых материалов. Продолжая использование сайта, Вы соглашаетесь с Политикой конфиденциальности и даете согласие на обработку персональных данных ООО «РМЖ» (ИНН 7731365056).

Читать дальше