Данный информационный сайт предназначен исключительно для медицинских, фармацевтических и иных работников системы здравоохранения.
Вся информация сайта www.rmj.ru (далее — Информация) может быть доступна исключительно для специалистов системы здравоохранения. В связи с этим для доступа к такой Информации от Вас требуется подтверждение Вашего статуса и факта наличия у Вас профессионального медицинского образования, а также того, что Вы являетесь действующим медицинским, фармацевтическим работником или иным соответствующим профессионалом, обладающим соответствующими знаниями и навыками в области медицины, фармацевтики, диагностики и здравоохранения РФ. Информация, содержащаяся на настоящем сайте, предназначена исключительно для ознакомления, носит научно-информационный характер и не должна расцениваться в качестве Информации рекламного характера для широкого круга лиц.
Информация не должна быть использована для замены непосредственной консультации с врачом и для принятия решения о применении продукции самостоятельно.
На основании вышесказанного, пожалуйста, подтвердите, что Вы являетесь действующим медицинским или фармацевтическим работником, либо иным работником системы здравоохранения.
28
лет
предоставляем актуальную медицинскую информацию от ведущих специалистов, помогая врачам в ежедневной работе
28
лет
предоставляем актуальную медицинскую информацию от ведущих специалистов, помогая врачам в ежедневной работе
28
лет
предоставляем актуальную медицинскую информацию от ведущих специалистов, помогая врачам в ежедневной работе
4062
29 ноября 2013
Ключевые слова:
Для цитирования: Бурденный А.М., Ходырев Д.С., Челышева Д.С., Пронина И.В., Воротников И.К., Сельчук В.Ю., Казубская Т.П., Брага Э.А., Логинов В.И. Роль метилирования в промоторных областях генов RASSF1A и MGMT в развитии рака молочной железы у русских г. Москвы. РМЖ. 2013;2:61.
Реферат. Эпигенетические изменения генов-супрессоров опухолевого роста рассматривают как важный механизм канцерогенеза многих типов рака. Важнейшим механизмом эпигенетической регуляции является метилирование промоторных областей этих генов. Данный механизм обнаруживается в опухолях различной локализации с частотой от 3 до 70%. Среди довольно большого числа генов-супрессоров, участвующих в развитии опухоли молочной железы, нами выделены два гена: RASSF1A (3р21.31) и MGMT (10q26).
Белковый продукт гена RASSF1A принимает участие в регуляции апоптоза и стабилизации микротрубочек (внутреннего скелета клетки), а также осуществляет контроль пролиферации клеток и регуляции гена MDM2. Последний, в свою очередь, ответственен за регуляцию важнейшего транскрипционного фактора и «дирижера» всех основных процессов – гена TP53. В то же время белковый продукт гена MGMT является ключевым элементом системы прямой репарации ДНК. Основной механизм инактивации генов RASSF1A и MGMT связан с метилированием их промоторных районов. В литературе данные о метилировании этих генов при раке молочной железы противоречивы.
Нами впервые показана высокая частота метилирования промоторного района гена MGMT при РМЖ (21%, 12/58). Частота метилирования гена RASSF1A (19%, 11/58) при РМЖ сопоставима с опубликованными данными. Впервые установлена достоверная корреляция частоты метилирования генов MGMT и RASSF1A с прогрессией РМЖ (р ≤0,05, по Фишеру). Также нами впервые показано, что при тройном негативном РМЖ происходит увеличение частоты метилирования обоих генов (33 и 40% соответственно). Метилирование промоторных районов этих генов относится к ранним событиям в патогенезе эпителиальных опухолей.
Ключевые слова: ген MGMT, ген RASSF1A, метилирование, промоторная область, CpG-островок, РМЖ.
Принятые сокращения: РМЖ – рак молочной железы; МСП – анализ с использованием метилспецифичной ПЦР; ипРМЖ – инфильтративно-протоковый рак молочной железы. идРМЖ – инфильтративно-дольковый рак молочной железы
Введение
Рак молочной железы (РМЖ) является наиболее часто диагностируемой онкологической патологией среди женщин во всем мире. Это заболевание характеризуется агрессивным течением, трудностью прогноза исхода болезни и высокой смертностью [1]. В России ежегодно от этого вида опухоли умирают более 20 тыс. человек [2]. Важную роль в патогенезе РМЖ играют эпигенетические нарушения в генах-супрессорах опухолевого роста (TSG), большинство из них являются генами «домашнего хозяйства», обеспечивающими поддержание нормального функционирования клетки, ее защиту от факторов внешней среды и поддержание целостности ее структуры [3]. Эпигенетическая модификация (метилирование) регуляторных участков этих генов нарушает их взаимодействие с факторами транскрипции, блокируя данные участки с помощью белков, специфично связывающихся с метилированными CpG-парами (Methyl-CpG binding proteins) и, кроме того, вносит изменения в окружающий хроматин, переводя его в стабильно репрессированное состояние [4–6]. К таким генам относятся гены-супрессоры RASSF1A и MGMT.
Ген RASSF1A располагается в кластере связанных с канцерогенезом генов в районе 3p21.31 [7]. Белковый продукт гена относится к цитоплазматическим белкам. Выявлено многообразие функций этого белка в клетке, например задержка клеточного цикла в фазе G1/S-перехода, которая влияет на содержание циклина D1 и фосфорилирование белка pRb [8]. Также белок гена RASSF1A вовлечен в индукцию апоптоза и стабилизацию микротрубочек [9]. Метилирование гена RASSF1A в опухолях разной локализации рассматривают как способ подавления его супрессорной функции при онкогенезе [10].
Ген MGMT кодирует фермент O6-метилгуанина-метилтрансферазу, который принимает участие в прямой репарации ДНК. Этот фермент активирует перенос метильной группы от O6-метилгуанина к остатку цистеина, что позволяет восстановить нормальную структуру ДНК после повреждения, вызванного алкильными соединениями [11]. В ряде работ показано, что гиперметилирование CpG-островка гена MGMT ассоциировано с инактивацией его транскрипции и сопровождается перестройкой хроматина в неактивное состояние. Метилирование промоторной области гена MGMT показано для рака толстой кишки и карцином печени [12, 13].
Одними из причин низкой выживаемости больных РМЖ являются бессимптомное течение заболевания на ранних стадиях, отсутствие достаточно эффективной диагностики и устойчивость пациентов к химиотерапии. Известно, что нарушение паттерна метилирования ДНК на всех стадиях канцерогенеза может быть использовано для диагностики и прогноза злокачественных опухолей [14].
В предлагаемой работе представлены результаты изучения метилирования промоторных районов генов RASSF1A и MGMT в эпителиальных опухолях молочной железы с использованием метода МСП (метилспецифичная ПЦР с использованием в качестве матрицы конвертируемой бисульфитом ДНК). Определена частота метилирования промоторных районов (т.е. доля образцов, в которых наблюдали метилирование) и показана достоверная корреляция частоты метилирования этих районов с прогрессией РМЖ.
Материалы и методы
Образцы первичных опухолей РМЖ были собраны и клинически охарактеризованы в РОНЦ РАМН. Принципы отбора образцов и выделения высокомолекулярной ДНК описаны ранее [15]. Исследованы парные образцы опухолевой и гистологически нормальной ткани от 58 пациентов с РМЖ (преимущественно инфильтративно-протоковой гистологии, ипРМЖ и идРМЖ). В качестве дополнительного контроля использованы ткани молочной железы от 10 умерших человек, не имеющих в анамнезе онкологических заболеваний.
Бисульфитную конверсию ДНК и метилспецифичную ПЦР (МС-ПЦР) проводили по методу, описанному в работе коллектива авторов из США [16] и России [17]. Для анализа метилирования каждого гена использовали две пары праймеров, специфичных как к метилированному, так и неметилированному аллелю (табл. 1). МС-ПЦР проводили в 20 мкл реакционной смеси, содержащей 67 мМ трис-HCl, рН 8,8; 16,7 мМ (NH4)2SO4; 0,01% Tween-20; 1,5 мМ MgCl2; 0,25 мМ каждого dNTP; 10–20 нг ДНК; 25 пмоль каждого праймера; 0,5 ед. Hot Start Taq-ДНК-полимеразы («СибЭнзим», Россия). Праймеры, температура отжига (Тотж) и размеры продукта ПЦР приведены в таблице 1. ПЦР проводили по программе: 95°С, 2 мин.; 35 циклов (92°С, 10 c; Тотж (табл. 1), 25 с; 72°С, 25); 72°С, 3 мин. на амплификаторe DNA Engine Dyad Cycler (Bio-Rad, США). Для каждой пары праймеров проверяли отсутствие продукта ПЦР на неконвертированной ДНК. Образцы ДНК из лейкоцитов крови здоровых доноров использовали как контроль для неметилированных аллелей. В качестве позитивного контроля 100% метилирования использовали препараты ДНК из лейкоцитов, обработанные метилтрансферазой SssI («СибЭнзим», Россия). Продукты ПЦР разделяли с помощью электрофореза в 10% полиакриламидном геле (рис. 1).
Статистический анализ проводили с применением точного критерия Фишера. Уровень значимости принят равным 0,05. Рассматривали также результаты статистически маргинально значимые (0,05<р<0,1), что соответствует доверительному интервалу 94% (в отличие от стандартного доверительного интервала 95% при р=0,05). Расчеты проводили в системе для статистического анализа данных STATISTICA 6.1 RUS.
Результаты и обсуждение
Анализ метилирования CpG-островков, расположенных в промоторных областях генов RASSF1A и MGMT, проводился с помощью МС-ПЦР. На рисунке 2 представлен комплекс данных по анализу метилирования этих генов в 58 случаях РМЖ. Рисунок включает данные с учетом клинико-морфологических параметров опухоли. Для обоих исследованных генов обнаружены более частые случаи метилирования в образцах опухолевой ткани, чем в образцах условно нормальной ткани молочной железы, причем различия статистически значимые (р≤0,05 по Фишеру, табл. 2). Частота метилирования генов RASSF1A и MGMT в образцах РМЖ составляет 19 и 21% соответственно. Следует отметить, что метилирование промоторных районов генов RASSF1A и MGMT в образцах ДНК из гистологически нормальной ткани, прилежащей к опухоли, отмечено не было. Кроме того, анализ образцов ДНК тканей молочной железы 10 доноров без онкопатологии в анамнезе показал полное отсутствие метилирования этих генов (табл. 2). Также нами показано значимое различие по частоте метилирования гена RASSF1A у пациентов с идРМЖ (р=0,035) и условно нормальной, прилежащей тканью. Ген MGMT чаще метилирован у пациентов с ипРМЖ (р=0,015), чем в условно нормальной, прилежащей ткани.
Данные о метилировании промоторных районов генов RASSF1A и MGMT противоречивы и варьируют в широких пределах: от 19 до 87% – для гена RASSF1A и от 8 до 20% – для гена MGMT при РМЖ [20–22]. При этом определенная нами частота метилирования гена RASSF1A при РМЖ весьма близка или совпадает с литературными данными [23, 24]. В то же время нами впервые отмечено значительное повышение частоты метилирования гена MGMT при РМЖ с 8% [25] до 21% у женщин московского региона (в других регионах России подобные исследования не проводились). При этом частота метилирования в опухолях больных с идРМЖ составила 43 и 29% соответственно. Интересно, что результаты мировых исследований выявляют 84% метилирования гена RASSF1A [26]. Данные по распределению частоты метилирования гена MGMT получены впервые. Для больных с ипРМЖ значения частоты метилирования составили 11 и 18% соответственно, что в 8 раз ниже для гена RASSF1A и в 2 раза выше для гена MGMT по сравнению с данными мировых исследований (85 и 9% соответственно) [27].
Наблюдаемые различия в частоте метилирования генов RASSF1A и MGMT могут быть связаны как с чувствительностью использованного метода, так и с этнографическими особенностями западно-европейской, американской и российской (московской) популяций.
Нами также были исследованы возможные корреляции между частотами метилирования генов и различными клинико-морфологическими характеристиками РМЖ: размером опухоли, клинической стадией, степенью дифференцировки и метастазированием. Статистически значимая корреляция с размером опухоли выявлена как для гена MGMT (р=2х10-6), так и для гена RASSF1A (р=0,035). Данная зависимость сохраняется и при анализе ипРМЖ (рис. 3). С переходом от ранних (I + II) к более поздним (III + IV) клиническим стадиям статистически значимо увеличивается частота метилирования как гена MGMT при РМЖ (8% (4/50) против 100% (8/8), р=2х10-6, рис. 3), так и гена RASSF1A (14% (7/50) против 50% (4/8), р=0,035, рис. 3). Кроме того, на более поздних стадиях онкологического процесса при ипРМЖ статистически значимо увеличивается частота метилирования и для гена MGMT, и для гена RASSF1A (рис. 3). Для гена MGMT выявлена значимая корреляция частоты метилирования с потерей дифференцировки при РМЖ (6% (2/35) в высоко- и умеренно-дифференцированных опухолях против 43% (10/23) в низко-дифференцированных опухолях, р=0,0008, рис. 3), также и для инфильтративно-протокового РМЖ (р=0,019, рис. 3). Для гена RASSF1A показана значимая корреляция частоты метилирования с потерей дифференцировки только для РМЖ (р=0,004, рис. 3). Для образцов с РМЖ и его гистологическими типами корреляции с образованием метастазов в регионарных лимфоузлах и других органах найдено не было.
При РМЖ нами было исследовано изменение частоты метилирования генов RASSF1A и MGMT в зависимости от иммуногистохимического статуса опухоли. Было показано, что при тройном негативном РМЖ происходит увеличение частоты метилирования обоих генов (33% (5/15) и 40% (6/15) соответственно). Однако статистически значимое различие показано только для ипРМЖ (36% (4/11) против 3% (1/33), р=0,01, рис. 3).
В ранее проведенных исследованиях метилирования генов RASSF1A и MGMT в опухоли молочной железы данные о связи между метилированием этих TSG и клиническими характеристиками опухолей крайне противоречивы, что может быть связано с различиями в лабораторных и статистических методах, размере выборки, состоянии здоровья самих пациентов.
Нами впервые установлена достоверная корреляция частоты метилирования промоторных районов генов RASSF1A и MGMT с различными клинико-морфологическими характеристиками РМЖ. Впервые исследована связь метилирования генов RASSF1A и MGMT и гормонального статуса рецепторов при РМЖ у пациентов московского региона. Полученные нами данные о связи метилирования гена RASSF1A с гормональным статусом рецепторов при РМЖ согласуются с данными других исследований [28, 29].
Все это позволяет рассматривать гены RASSF1A и MGMT как молекулярные маркеры неблагоприятного прогноза [29, 30].
Заключение
Таким образом, в настоящей работе изучено метилирование промоторных районов генов MGMT и RASSF1A у пациенток с РМЖ, проживающих в Москве и Московской области. Показана высокая частота метилирования изученных генов в опухоли молочной железы по сравнению с гистологически нормальной тканью от тех же пациенток. Выявлены значимые корреляции частоты метилирования генов RASSF1A и MGMT с различными клинико-морфологическими характеристиками злокачественного процесса. Впервые показана связь метилирования промоторных районов этих генов с тройным негативным фенотипом при ипРМЖ у жительниц московского региона.
Выявленные особенности могли бы быть использованы для разработки современных подходов к прогнозированию, профилактике и лечению РМЖ у пациенток московского региона.
Литература
1. Jemal A., Center M.M., DeSantis C., Ward E.M. Global patterns of cancer incidence and mortality rate and trends // Cancer Epid. Biomar. Prev. 2010. Vol. 19, № 8. P. 1893–1907.
2. Чиссов В.И., Старинский В.В., Петрова Г.В. Злокачественные новообразования в России в 2010 году (заболеваемость и смертность). М.: ФГБУ «МНИОИ им. П.А. Герцена» Минздравсоцразвития России, 2012. 260 с.
3. Buganim Y., Rotter V. p53: balancing tumour suppression and implications for the clinic // Eur. J. Cancer. 2009. Vol. 45. P. 217–234.
4. Bird A. DNA methylation patterns and epigenetic memory // Genes Dev. 2002. Vol. 16. Р. 6–21.
5. Prokhortchouk E., Hendrich B. Methyl-CpG binding proteins and cancer: are MeCpGs more important than MBDs // Oncogene. 2002. Vol. 21. P. 5394–5399.
6. Koutsimpelas D., Pongsapich W., Heinrich U. et al. Promoter methylation of MGMT, MLH1 and RASSF1A tumor suppressor genes in head and neck squamous cell carcinoma: pharmacological genome demethylation reduces proliferation of head and neck squamous carcinoma cells // Oncol. Rep. 2012. Vol. 27, № 4. Р. 1135–1141.
7. Hesson L.B., Cooper W.N., Latif F. The role of RASSF1A methylation in cancer // Dis Markers. 2007. Vol. 23. № 1–2. Р. 73–87.
8. Shivakumar L., Minna J.D., Sakamaki T. et al. 2002. The RASSF1A tumor suppressor blocks cell cycle progression and inhibits cyclin D1 accumulation // Mol. Cell. Biol. Vol. 22. P. 4309–4318.
9. Agathanggelou A., Cooper W.N., Latif F. Role of the Ras-association domain family 1 tumor suppressor gene in human cancers // Cancer Res. 2005. Vol. 65. № 9. Р. 3497–3508.
10. Dammann R., Schagdarsurengin U., Seidel C. et al. The tumor suppressor RASSF1A in human carcinogenesis: an update // Histol. Histopathol. 2005. Vol. 20. № 2. P. 645–663.
11. Sato A., Sunayama J., Matsuda K.I. MEK-ERK Signaling Dictates DNA-Repair Gene MGMT Expression and Temozolomide Resistance of Stem-Like Glioblastoma Cells via the MDM2-p53 //Axis STEM CELLS. 2011. Vol. 29. P. 1942–1951.
12. Abouzeid H.E., Kassem A.M., Abdel Wahab A.H. et al. Promoter hypermethylation of RASSF1A, MGMT, and HIC-1 genes in benign and malignant colorectal tumors // Tumour Biol. 2011. Vol. 32. № 5. Р. 845–852.
13. Li Z., Zhang H., Yang J. et al. Promoter hypermethylation of DNA damage response genes in hepatocellular carcinoma // Cell. Biol. Int. 2012. Vol. 36. № 5. P. 427–432.
14. Kulis M., Esteller M. DNA methylation and cancer // Adv. Genet. 2010. Vol. 70. P. 27–56.
15. Логинов В.И., Базов В.И., Ходырев Д.С. и др. Районы потенциальных генов-супрессоров эпителиальных опухолей почки, молочной железы и яичников на хромосоме 3 человека //Генетика. 2008. Т. 44. С. 250–256.
16. Herman J.G., Graff J.R., Myohanen S. et al. Methylationspecific PCR: a novel PCR assay for methylation status of CpG islands // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1996. Vol. 93. № 18. P. 9821–9826.
17. Береснева Е.В., Рыков С.В., Ходырев Д.С. и др. Профиль метилирования группы генов микроРНК при светлоклеточном почечноклеточном раке; связь с прогрессией рака // Генетика. 2013, Т. 49. № 3. C. 366–375.
18. Esteller M., Hamilton S.R., Burger P.C. et al. Inactivation of the DNA repair gene O6-methylguanine-DNA methyltransferase by promoter hypermethylation is a common event in primary human neoplasia // Cancer Res. 1999. Vol. 59. № 4. Р. 793–797.
19. Логинов В.И., Малюкова А.В., Серегин Ю.А. и др. Уровень метилирования гена RASSF1A в эпителиальных опухолях почки, молочной железы и яичников // Молекуляр. биология. 2004. Т. 38. С. 654–66798, С. 7504–7509.
20. Jiang Y., Cui L., Chen W.D. et al. The prognostic role of RASSF1A promoter methylation in breast cancer: a meta-analysis of published data // PLoS One. 2012. Vol. 7. № 5. Р. 367–380.
21. Tserga A., Michalopoulos N.V., Levidou G. et al. Association of aberrant DNA methylation with clinicopathological features in breast cancer // Oncol. Rep. 2012. Vol. 27. № 5. Р. 1630–1638.
22. Sharma G., Mirza S., Parshad R. et al. Clinical significance of promoter hypermethylation of DNA repair genes in tumor and serum DNA in invasive ductal breast carcinoma patients // Life Sci. 2010. Vol. 87. № 3–4. Р. 83–91.
23. Kajabova V., Smolkova B., Zmetakova I. et al. RASSF1A Promoter Methylation Levels Positively Correlate with Estrogen Receptor Expression in Breast Cancer Patients // Transl. Oncol. 2013. Vol. 6. № 3. Р. 297–304.
24. Pfeifer G.P., Dammann R., Tommasi S. RASSF proteins // Curr. Biol. 2010. Vol. 20. № 8. R. 344–345.
25. Землякова В.В., Жевлова А.И., Зборовская И.Б. и др. Профиль метилирования некоторых генов-супрессоров опухолевого роста при немелкоклеточном раке легкого // Молекуляр. биология. 2003. Т. 37, № 6. С. 983–988.
26. Fackler M.J., McVeigh M., Evron E. et al. DNA methylation of RASSF1A, HIN-1, RAR-beta, Cyclin D2 and Twist in in situ and invasive lobular breast carcinoma // Int. J. Cancer. 2003. Vol. 107. № 6. Р. 970–975.
27. Muggerud A.A., Rønneberg J.A., Wärnberg F. et al. Frequent aberrant DNA methylation of ABCB1, FOXC1, PPP2R2B and PTEN in ductal carcinoma in situ and early invasive breast cancer // Breast Cancer Res. 2010. Vol. 12. № 1. R. 3.
28. Feng W., Shen L., Wen S. et al. Correlation between CpG methylation profiles and hormone receptor status in breast cancers // Breast Cancer Res. 2007. Vol. 9. R. 57.
29. Xu J., Shetty P.B., Feng W. et al. Methylation of HIN-1, RASSF1A, RIL and CDH13 in breast cancer is associated with clinical characteristics, but only RASSF1A methylation is associated with outcome // BMC Cancer. 2012. Vol. 12. Р. 243.
30. Karray-Chouayekh S., Trifa F., Khabir A. et al. Aberrant methylation of RASSF1A is associated with poor survival in Tunisian breast cancer patients // J. Cancer Res. Clin. Oncol. 2010. Vol.136. № 2. Р. 203–210.
Нами впервые показана высокая частота метилирования промоторного района гена MGMT при РМЖ (21%, 12/58). Частота метилирования гена RASSF1A (19%, 11/58) при РМЖ сопоставима с опубликованными данными. Впервые установлена достоверная корреляция частоты метилирования генов MGMT и RASSF1A с прогрессией РМЖ (р ≤0,05, по Фишеру). Также нами впервые показано, что при тройном негативном РМЖ происходит увеличение частоты метилирования обоих генов (33 и 40% соответственно). Метилирование промоторных районов этих генов относится к ранним событиям в патогенезе эпителиальных опухолей.
Ключевые слова: ген MGMT, ген RASSF1A, метилирование, промоторная область, CpG-островок, РМЖ.
Принятые сокращения: РМЖ – рак молочной железы; МСП – анализ с использованием метилспецифичной ПЦР; ипРМЖ – инфильтративно-протоковый рак молочной железы. идРМЖ – инфильтративно-дольковый рак молочной железы
Введение
Рак молочной железы (РМЖ) является наиболее часто диагностируемой онкологической патологией среди женщин во всем мире. Это заболевание характеризуется агрессивным течением, трудностью прогноза исхода болезни и высокой смертностью [1]. В России ежегодно от этого вида опухоли умирают более 20 тыс. человек [2]. Важную роль в патогенезе РМЖ играют эпигенетические нарушения в генах-супрессорах опухолевого роста (TSG), большинство из них являются генами «домашнего хозяйства», обеспечивающими поддержание нормального функционирования клетки, ее защиту от факторов внешней среды и поддержание целостности ее структуры [3]. Эпигенетическая модификация (метилирование) регуляторных участков этих генов нарушает их взаимодействие с факторами транскрипции, блокируя данные участки с помощью белков, специфично связывающихся с метилированными CpG-парами (Methyl-CpG binding proteins) и, кроме того, вносит изменения в окружающий хроматин, переводя его в стабильно репрессированное состояние [4–6]. К таким генам относятся гены-супрессоры RASSF1A и MGMT.
Ген RASSF1A располагается в кластере связанных с канцерогенезом генов в районе 3p21.31 [7]. Белковый продукт гена относится к цитоплазматическим белкам. Выявлено многообразие функций этого белка в клетке, например задержка клеточного цикла в фазе G1/S-перехода, которая влияет на содержание циклина D1 и фосфорилирование белка pRb [8]. Также белок гена RASSF1A вовлечен в индукцию апоптоза и стабилизацию микротрубочек [9]. Метилирование гена RASSF1A в опухолях разной локализации рассматривают как способ подавления его супрессорной функции при онкогенезе [10].
Ген MGMT кодирует фермент O6-метилгуанина-метилтрансферазу, который принимает участие в прямой репарации ДНК. Этот фермент активирует перенос метильной группы от O6-метилгуанина к остатку цистеина, что позволяет восстановить нормальную структуру ДНК после повреждения, вызванного алкильными соединениями [11]. В ряде работ показано, что гиперметилирование CpG-островка гена MGMT ассоциировано с инактивацией его транскрипции и сопровождается перестройкой хроматина в неактивное состояние. Метилирование промоторной области гена MGMT показано для рака толстой кишки и карцином печени [12, 13].
Одними из причин низкой выживаемости больных РМЖ являются бессимптомное течение заболевания на ранних стадиях, отсутствие достаточно эффективной диагностики и устойчивость пациентов к химиотерапии. Известно, что нарушение паттерна метилирования ДНК на всех стадиях канцерогенеза может быть использовано для диагностики и прогноза злокачественных опухолей [14].
В предлагаемой работе представлены результаты изучения метилирования промоторных районов генов RASSF1A и MGMT в эпителиальных опухолях молочной железы с использованием метода МСП (метилспецифичная ПЦР с использованием в качестве матрицы конвертируемой бисульфитом ДНК). Определена частота метилирования промоторных районов (т.е. доля образцов, в которых наблюдали метилирование) и показана достоверная корреляция частоты метилирования этих районов с прогрессией РМЖ.
Материалы и методы
Образцы первичных опухолей РМЖ были собраны и клинически охарактеризованы в РОНЦ РАМН. Принципы отбора образцов и выделения высокомолекулярной ДНК описаны ранее [15]. Исследованы парные образцы опухолевой и гистологически нормальной ткани от 58 пациентов с РМЖ (преимущественно инфильтративно-протоковой гистологии, ипРМЖ и идРМЖ). В качестве дополнительного контроля использованы ткани молочной железы от 10 умерших человек, не имеющих в анамнезе онкологических заболеваний.
Бисульфитную конверсию ДНК и метилспецифичную ПЦР (МС-ПЦР) проводили по методу, описанному в работе коллектива авторов из США [16] и России [17]. Для анализа метилирования каждого гена использовали две пары праймеров, специфичных как к метилированному, так и неметилированному аллелю (табл. 1). МС-ПЦР проводили в 20 мкл реакционной смеси, содержащей 67 мМ трис-HCl, рН 8,8; 16,7 мМ (NH4)2SO4; 0,01% Tween-20; 1,5 мМ MgCl2; 0,25 мМ каждого dNTP; 10–20 нг ДНК; 25 пмоль каждого праймера; 0,5 ед. Hot Start Taq-ДНК-полимеразы («СибЭнзим», Россия). Праймеры, температура отжига (Тотж) и размеры продукта ПЦР приведены в таблице 1. ПЦР проводили по программе: 95°С, 2 мин.; 35 циклов (92°С, 10 c; Тотж (табл. 1), 25 с; 72°С, 25); 72°С, 3 мин. на амплификаторe DNA Engine Dyad Cycler (Bio-Rad, США). Для каждой пары праймеров проверяли отсутствие продукта ПЦР на неконвертированной ДНК. Образцы ДНК из лейкоцитов крови здоровых доноров использовали как контроль для неметилированных аллелей. В качестве позитивного контроля 100% метилирования использовали препараты ДНК из лейкоцитов, обработанные метилтрансферазой SssI («СибЭнзим», Россия). Продукты ПЦР разделяли с помощью электрофореза в 10% полиакриламидном геле (рис. 1).
Статистический анализ проводили с применением точного критерия Фишера. Уровень значимости принят равным 0,05. Рассматривали также результаты статистически маргинально значимые (0,05<р<0,1), что соответствует доверительному интервалу 94% (в отличие от стандартного доверительного интервала 95% при р=0,05). Расчеты проводили в системе для статистического анализа данных STATISTICA 6.1 RUS.
Результаты и обсуждение
Анализ метилирования CpG-островков, расположенных в промоторных областях генов RASSF1A и MGMT, проводился с помощью МС-ПЦР. На рисунке 2 представлен комплекс данных по анализу метилирования этих генов в 58 случаях РМЖ. Рисунок включает данные с учетом клинико-морфологических параметров опухоли. Для обоих исследованных генов обнаружены более частые случаи метилирования в образцах опухолевой ткани, чем в образцах условно нормальной ткани молочной железы, причем различия статистически значимые (р≤0,05 по Фишеру, табл. 2). Частота метилирования генов RASSF1A и MGMT в образцах РМЖ составляет 19 и 21% соответственно. Следует отметить, что метилирование промоторных районов генов RASSF1A и MGMT в образцах ДНК из гистологически нормальной ткани, прилежащей к опухоли, отмечено не было. Кроме того, анализ образцов ДНК тканей молочной железы 10 доноров без онкопатологии в анамнезе показал полное отсутствие метилирования этих генов (табл. 2). Также нами показано значимое различие по частоте метилирования гена RASSF1A у пациентов с идРМЖ (р=0,035) и условно нормальной, прилежащей тканью. Ген MGMT чаще метилирован у пациентов с ипРМЖ (р=0,015), чем в условно нормальной, прилежащей ткани.
Данные о метилировании промоторных районов генов RASSF1A и MGMT противоречивы и варьируют в широких пределах: от 19 до 87% – для гена RASSF1A и от 8 до 20% – для гена MGMT при РМЖ [20–22]. При этом определенная нами частота метилирования гена RASSF1A при РМЖ весьма близка или совпадает с литературными данными [23, 24]. В то же время нами впервые отмечено значительное повышение частоты метилирования гена MGMT при РМЖ с 8% [25] до 21% у женщин московского региона (в других регионах России подобные исследования не проводились). При этом частота метилирования в опухолях больных с идРМЖ составила 43 и 29% соответственно. Интересно, что результаты мировых исследований выявляют 84% метилирования гена RASSF1A [26]. Данные по распределению частоты метилирования гена MGMT получены впервые. Для больных с ипРМЖ значения частоты метилирования составили 11 и 18% соответственно, что в 8 раз ниже для гена RASSF1A и в 2 раза выше для гена MGMT по сравнению с данными мировых исследований (85 и 9% соответственно) [27].
Наблюдаемые различия в частоте метилирования генов RASSF1A и MGMT могут быть связаны как с чувствительностью использованного метода, так и с этнографическими особенностями западно-европейской, американской и российской (московской) популяций.
Нами также были исследованы возможные корреляции между частотами метилирования генов и различными клинико-морфологическими характеристиками РМЖ: размером опухоли, клинической стадией, степенью дифференцировки и метастазированием. Статистически значимая корреляция с размером опухоли выявлена как для гена MGMT (р=2х10-6), так и для гена RASSF1A (р=0,035). Данная зависимость сохраняется и при анализе ипРМЖ (рис. 3). С переходом от ранних (I + II) к более поздним (III + IV) клиническим стадиям статистически значимо увеличивается частота метилирования как гена MGMT при РМЖ (8% (4/50) против 100% (8/8), р=2х10-6, рис. 3), так и гена RASSF1A (14% (7/50) против 50% (4/8), р=0,035, рис. 3). Кроме того, на более поздних стадиях онкологического процесса при ипРМЖ статистически значимо увеличивается частота метилирования и для гена MGMT, и для гена RASSF1A (рис. 3). Для гена MGMT выявлена значимая корреляция частоты метилирования с потерей дифференцировки при РМЖ (6% (2/35) в высоко- и умеренно-дифференцированных опухолях против 43% (10/23) в низко-дифференцированных опухолях, р=0,0008, рис. 3), также и для инфильтративно-протокового РМЖ (р=0,019, рис. 3). Для гена RASSF1A показана значимая корреляция частоты метилирования с потерей дифференцировки только для РМЖ (р=0,004, рис. 3). Для образцов с РМЖ и его гистологическими типами корреляции с образованием метастазов в регионарных лимфоузлах и других органах найдено не было.
При РМЖ нами было исследовано изменение частоты метилирования генов RASSF1A и MGMT в зависимости от иммуногистохимического статуса опухоли. Было показано, что при тройном негативном РМЖ происходит увеличение частоты метилирования обоих генов (33% (5/15) и 40% (6/15) соответственно). Однако статистически значимое различие показано только для ипРМЖ (36% (4/11) против 3% (1/33), р=0,01, рис. 3).
В ранее проведенных исследованиях метилирования генов RASSF1A и MGMT в опухоли молочной железы данные о связи между метилированием этих TSG и клиническими характеристиками опухолей крайне противоречивы, что может быть связано с различиями в лабораторных и статистических методах, размере выборки, состоянии здоровья самих пациентов.
Нами впервые установлена достоверная корреляция частоты метилирования промоторных районов генов RASSF1A и MGMT с различными клинико-морфологическими характеристиками РМЖ. Впервые исследована связь метилирования генов RASSF1A и MGMT и гормонального статуса рецепторов при РМЖ у пациентов московского региона. Полученные нами данные о связи метилирования гена RASSF1A с гормональным статусом рецепторов при РМЖ согласуются с данными других исследований [28, 29].
Все это позволяет рассматривать гены RASSF1A и MGMT как молекулярные маркеры неблагоприятного прогноза [29, 30].
Заключение
Таким образом, в настоящей работе изучено метилирование промоторных районов генов MGMT и RASSF1A у пациенток с РМЖ, проживающих в Москве и Московской области. Показана высокая частота метилирования изученных генов в опухоли молочной железы по сравнению с гистологически нормальной тканью от тех же пациенток. Выявлены значимые корреляции частоты метилирования генов RASSF1A и MGMT с различными клинико-морфологическими характеристиками злокачественного процесса. Впервые показана связь метилирования промоторных районов этих генов с тройным негативным фенотипом при ипРМЖ у жительниц московского региона.
Выявленные особенности могли бы быть использованы для разработки современных подходов к прогнозированию, профилактике и лечению РМЖ у пациенток московского региона.
Литература
1. Jemal A., Center M.M., DeSantis C., Ward E.M. Global patterns of cancer incidence and mortality rate and trends // Cancer Epid. Biomar. Prev. 2010. Vol. 19, № 8. P. 1893–1907.
2. Чиссов В.И., Старинский В.В., Петрова Г.В. Злокачественные новообразования в России в 2010 году (заболеваемость и смертность). М.: ФГБУ «МНИОИ им. П.А. Герцена» Минздравсоцразвития России, 2012. 260 с.
3. Buganim Y., Rotter V. p53: balancing tumour suppression and implications for the clinic // Eur. J. Cancer. 2009. Vol. 45. P. 217–234.
4. Bird A. DNA methylation patterns and epigenetic memory // Genes Dev. 2002. Vol. 16. Р. 6–21.
5. Prokhortchouk E., Hendrich B. Methyl-CpG binding proteins and cancer: are MeCpGs more important than MBDs // Oncogene. 2002. Vol. 21. P. 5394–5399.
6. Koutsimpelas D., Pongsapich W., Heinrich U. et al. Promoter methylation of MGMT, MLH1 and RASSF1A tumor suppressor genes in head and neck squamous cell carcinoma: pharmacological genome demethylation reduces proliferation of head and neck squamous carcinoma cells // Oncol. Rep. 2012. Vol. 27, № 4. Р. 1135–1141.
7. Hesson L.B., Cooper W.N., Latif F. The role of RASSF1A methylation in cancer // Dis Markers. 2007. Vol. 23. № 1–2. Р. 73–87.
8. Shivakumar L., Minna J.D., Sakamaki T. et al. 2002. The RASSF1A tumor suppressor blocks cell cycle progression and inhibits cyclin D1 accumulation // Mol. Cell. Biol. Vol. 22. P. 4309–4318.
9. Agathanggelou A., Cooper W.N., Latif F. Role of the Ras-association domain family 1 tumor suppressor gene in human cancers // Cancer Res. 2005. Vol. 65. № 9. Р. 3497–3508.
10. Dammann R., Schagdarsurengin U., Seidel C. et al. The tumor suppressor RASSF1A in human carcinogenesis: an update // Histol. Histopathol. 2005. Vol. 20. № 2. P. 645–663.
11. Sato A., Sunayama J., Matsuda K.I. MEK-ERK Signaling Dictates DNA-Repair Gene MGMT Expression and Temozolomide Resistance of Stem-Like Glioblastoma Cells via the MDM2-p53 //Axis STEM CELLS. 2011. Vol. 29. P. 1942–1951.
12. Abouzeid H.E., Kassem A.M., Abdel Wahab A.H. et al. Promoter hypermethylation of RASSF1A, MGMT, and HIC-1 genes in benign and malignant colorectal tumors // Tumour Biol. 2011. Vol. 32. № 5. Р. 845–852.
13. Li Z., Zhang H., Yang J. et al. Promoter hypermethylation of DNA damage response genes in hepatocellular carcinoma // Cell. Biol. Int. 2012. Vol. 36. № 5. P. 427–432.
14. Kulis M., Esteller M. DNA methylation and cancer // Adv. Genet. 2010. Vol. 70. P. 27–56.
15. Логинов В.И., Базов В.И., Ходырев Д.С. и др. Районы потенциальных генов-супрессоров эпителиальных опухолей почки, молочной железы и яичников на хромосоме 3 человека //Генетика. 2008. Т. 44. С. 250–256.
16. Herman J.G., Graff J.R., Myohanen S. et al. Methylationspecific PCR: a novel PCR assay for methylation status of CpG islands // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1996. Vol. 93. № 18. P. 9821–9826.
17. Береснева Е.В., Рыков С.В., Ходырев Д.С. и др. Профиль метилирования группы генов микроРНК при светлоклеточном почечноклеточном раке; связь с прогрессией рака // Генетика. 2013, Т. 49. № 3. C. 366–375.
18. Esteller M., Hamilton S.R., Burger P.C. et al. Inactivation of the DNA repair gene O6-methylguanine-DNA methyltransferase by promoter hypermethylation is a common event in primary human neoplasia // Cancer Res. 1999. Vol. 59. № 4. Р. 793–797.
19. Логинов В.И., Малюкова А.В., Серегин Ю.А. и др. Уровень метилирования гена RASSF1A в эпителиальных опухолях почки, молочной железы и яичников // Молекуляр. биология. 2004. Т. 38. С. 654–66798, С. 7504–7509.
20. Jiang Y., Cui L., Chen W.D. et al. The prognostic role of RASSF1A promoter methylation in breast cancer: a meta-analysis of published data // PLoS One. 2012. Vol. 7. № 5. Р. 367–380.
21. Tserga A., Michalopoulos N.V., Levidou G. et al. Association of aberrant DNA methylation with clinicopathological features in breast cancer // Oncol. Rep. 2012. Vol. 27. № 5. Р. 1630–1638.
22. Sharma G., Mirza S., Parshad R. et al. Clinical significance of promoter hypermethylation of DNA repair genes in tumor and serum DNA in invasive ductal breast carcinoma patients // Life Sci. 2010. Vol. 87. № 3–4. Р. 83–91.
23. Kajabova V., Smolkova B., Zmetakova I. et al. RASSF1A Promoter Methylation Levels Positively Correlate with Estrogen Receptor Expression in Breast Cancer Patients // Transl. Oncol. 2013. Vol. 6. № 3. Р. 297–304.
24. Pfeifer G.P., Dammann R., Tommasi S. RASSF proteins // Curr. Biol. 2010. Vol. 20. № 8. R. 344–345.
25. Землякова В.В., Жевлова А.И., Зборовская И.Б. и др. Профиль метилирования некоторых генов-супрессоров опухолевого роста при немелкоклеточном раке легкого // Молекуляр. биология. 2003. Т. 37, № 6. С. 983–988.
26. Fackler M.J., McVeigh M., Evron E. et al. DNA methylation of RASSF1A, HIN-1, RAR-beta, Cyclin D2 and Twist in in situ and invasive lobular breast carcinoma // Int. J. Cancer. 2003. Vol. 107. № 6. Р. 970–975.
27. Muggerud A.A., Rønneberg J.A., Wärnberg F. et al. Frequent aberrant DNA methylation of ABCB1, FOXC1, PPP2R2B and PTEN in ductal carcinoma in situ and early invasive breast cancer // Breast Cancer Res. 2010. Vol. 12. № 1. R. 3.
28. Feng W., Shen L., Wen S. et al. Correlation between CpG methylation profiles and hormone receptor status in breast cancers // Breast Cancer Res. 2007. Vol. 9. R. 57.
29. Xu J., Shetty P.B., Feng W. et al. Methylation of HIN-1, RASSF1A, RIL and CDH13 in breast cancer is associated with clinical characteristics, but only RASSF1A methylation is associated with outcome // BMC Cancer. 2012. Vol. 12. Р. 243.
30. Karray-Chouayekh S., Trifa F., Khabir A. et al. Aberrant methylation of RASSF1A is associated with poor survival in Tunisian breast cancer patients // J. Cancer Res. Clin. Oncol. 2010. Vol.136. № 2. Р. 203–210.
Похожие статьи
Новости/Конференции
Все новости
19 апреля 2024
Диспансеризация для оценки репродуктивного здоровья
Ближайшие конференции
Читать дальше