Острый тонзиллофарингит стрептококковой этиологии у детей: важность быстрой диагностики

лет

предоставляем актуальную медицинскую информацию от ведущих специалистов, помогая врачам в ежедневной работе

Присоединяйтесь!

Личный кабинет

лет

Присоединяйтесь!

лет

Присоединяйтесь!

Острый тонзиллофарингит стрептококковой этиологии у детей: важность быстрой диагностики

string(5) "75063"

Педиатрия

1859

30 марта 2023

ФГБОУ ДПО РМАНПО Минздрава России, Москва, Россия

ГБУЗ «ДГКБ им. З.А. Башляевой ДЗМ», Москва, Россия

Статья посвящена острому тонзиллофарингиту (ОТФ) и наиболее частой причине бактериального ОТФ — β-гемолитическому стрептококку группы А (БГСА) — патогену, передающемуся воздушно-капельным путем и поражающему исключительно человека. Он поражает до 35% педиатрических пациентов, чаще всего встречается у детей школьного возраста с пиком заболеваемости в 7–8 лет. Сложность диагностики ОТФ БГСА-этиологии обусловлена схожестью симптомов вирусной и стрептококковой форм заболевания. Отмечено, что нерациональное использование антибактериальной терапии повышает риск антибиотикорезистентности, развития осложнений у пациента, увеличивает нагрузку на медицинских работников и систему здравоохранения. В то же время проводимое согласно клиническим рекомендациям антибактериальное лечение острого стрептококкового тонзиллофарингита практически элиминирует БГСА в глотке и тем самым значительно снижает риск развития осложнений. Обоснована важность активного внедрения диагностических тестов, позволяющих в короткие сроки (5–10 мин) дифференцировать вирусную и стрептококковую причины ОТФ. Простым и надежным способом подтверждения стрептококковой этиологии ОТФ является экспресс-тестирование для выявления антигенов стрептококка группы А в мазке с задней стенки глотки с помощью тест-систем, основанных, в частности, на методе иммунохроматографии («Стрептатест^®»), — «золотого стандарта» диагностики стрептококкового ОТФ, для использования которой не требуется дополнительно обучать медицинский персонал. Результаты экспресс-теста «Стрептатест^®» позволяют своевременно и адекватно назначить необходимое пациенту лечение.

Ключевые слова: острый тонзиллофарингит, β-гемолитический стрептококк группы А, диагностика, экспресс-тест, иммунохроматография.

Acute tonsillopharyngitis of streptococcal etiology in children: the importance of rapid diagnosis

I.N. Zakharova¹, I.V. Berezhnaya¹, I.D. Maykova², N.F. Dubovets², D.K. Dmitrieva¹

¹Russian Medical Academy of Continuous Professional Education, Moscow

²Z.A. Bashlyaeva Children City Clinical Hospital, Moscow

The article is devoted to acute tonsillopharyngitis (ATP) and the most common cause of bacterial ATP — β-hemolytic group A streptococcus (BHGAS) — a pathogen transmitted by airborne droplets and affecting, exceptionally, humans. It affects up to 35% of pediatric patients, most commonly occurs in school-age children with a peak incidence of 7–8 years. The diagnosis complexity of ATP in BHGAS etiology is due to the symptoms similarity of the viral and streptococcal disease forms. It is noted that the irrational use of antibacterial therapy increases the risk of antibiotic resistance, the complications development in the patient, increases the burden on medical workers and the healthcare system. At the same time, the antibacterial treatment of acute streptococcal tonsillopharyngitis, conducted according to clinical recommendations, practically eliminates BHGAS in the pharynx and, thereby, significantly reduces the risk of complications. The importance concerning the active implementation of diagnostic tests, allowing in a short time (5–10 minutes), is substantiated to differentiate the viral and streptococcal cause of ATP. A simple and reliable way to confirm the streptococcal etiology of ATP is rapid test to detect group A streptococcus antigen in a smear from the posterior pharyngeal wall using test systems based, in particular, on the method of immunochromatography («Streptatest^®») — the gold standard for the diagnosis of streptococcal ATP, which does not require additional briefing for medical personnel. The results of the Streptatest allow timely and adequate prescribing of the necessary treatment to the patient.

Keywords: acute tonsillopharyngitis, β-hemolytic group A streptococcus, diagnosis, rapid test, immunochromatography.

For citation: Zakharova I.N., Berezhnaya I.V., Maykova I.D. et al. Acute tonsillopharyngitis of streptococcal etiology in children: the importance of rapid diagnosis. RMJ. 2023;2:67–71.

Для цитирования: Захарова И.Н., Бережная И.В., Майкова И.Д., Дубовец Н.Ф., Дмитриева Д.К. Острый тонзиллофарингит стрептококковой этиологии у детей: важность быстрой диагностики. РМЖ. 2023;2:67-70.

Введение

Острый тонзиллофарингит (ОТФ) — объединяющий термин тонзиллита (инфекционное воспаление лимфоидных образований глоточного кольца) и фарингита (инфекционное воспаление слизистой оболочки задней стенки глотки). Большинство ОТФ провоцируются различными вирусными агентами, такими как грипп, коронавирус, риновирус, аденовирус, энтеровирус, вирус иммунодефицита человека, вирус Эпштейна — Барр, цитомегаловирус и вирус простого герпеса, и не требуют назначения антибактериальной терапии¹.

Причиной 15–30% ОТФ в педиатрической популяции является β-гемолитический стрептококк группы А (БГСА, Streptococcus pyogenes), способный вызывать ОТФ, импетиго, рожу и скарлатину [1]. Название микроорганизма "Streptococcus" произошло от двух греческих слов: «стрептос» — «цепочка» и «коккус» — «зерно», что отсылает к внешнему виду данных бактерий, образующих цепочку из шаровидных или овоидных элементов. Еще 100 лет назад не существовало единой классификации стрептококков, хотя впервые они были обнаружены (и названы) Т. Бильротом в 1874 г. как возбудители рожи, а в виде чистой культуры были выделены в 1883 г. Далее немецкие исследователи Шот-Мюллер и Браун, изучая рост бактерий на кровяном агаре, разделили различные штаммы на 3 группы в зависимости от их гемолитической активности — α, β и γ. Альфа-гемолитические стрептококки («зеленящие стрептококки») провоцируют окисление гемоглобина в эритроцитах, из-за чего образуется зеленоватый ореол вокруг колоний. Бета-гемолитические стрептококки образуют вокруг себя прозрачную среду вследствие разрушения эритроцитов. Гамма-гемолитические стрептококки не изменяют кровяной агар. Выдающийся американский микробиолог Ребекка Лэнсфилд в марте 1933 г. опубликовала работу «Серологическая дифференциация человеческих и других групп гемолитических стрептококков» [2], в которой предложила новую классификацию по результатам изучения 106 различных штаммов, основанную на различиях в структуре полисахаридных антигенов клеточной стенки. В ходе ее наблюдений было классифицировано 5 групп — A, B, C, D и E. Позже классификация на основе предложенных принципов была расширена вплоть до буквы М [3].

Микробиологическая характеристика БГСА

В человеческой патологии наиболее важное значение имеют β-гемолитические стрептококки групп А и В. S. pyogenes — классический внеклеточный патоген, ответственный за широкий спектр инфекций, возбудитель фарингита, импетиго и более тяжелых инфекций — относится к серологической группе А, является возбудителем инфекций только у человека. Статистические данные показывают, что в течение года БГСА ответственен примерно за 616 млн случаев ОТФ в мире [4]. Геном БГСА состоит из 1,6–1,9 млн пар оснований, кодируя около 1717 генов, включает 5–6 оперонов 16s рРНК, 57–67 тРНК, 0–10 профаговых элементов и 0–1 плазмидов [5]. Все факторы вирулентности БГСА обладают сродством к клеткам человека. Цепочка бактерий экспрессирует поверхностные белки и секретируемые факторы, ведущие:

к деградации иммуноглобулинов и факторов комплемента (EndoS, Mac, C5a пептидаза);
ингибированию комплемента (за счет М-белка, экспрессии капсулы);
связыванию внеклеточного матрикса и сывороточных белков посредством многочисленных компонентов микробной поверхности, распознающих адгезивные матричные молекулы (М-белок, Cpa, Eno, Epf);
дисрегуляции коагуляции;
цитотоксической и цитолитической активности в отношении различных клеток хозяина [6].

У различных серотипов БГСА может экспрессироваться и секретироваться различное количество суперантигенов [6, 7]. Являясь достаточно успешным патогеном, БГСА контролирует экспрессию генов фактора вирулентности, сводя к минимуму количество доступных для распознавания иммунной системой белков [8]. Известна и активно изучается способность 90% серотипов БГСА создавать микроколонии и образовывать биопленки, снижающие эффективность антибиотикотерапии [9]. Например, при закреплении в верхних дыхательных путях образование там микроколоний может быть связано с неэффективностью классической антибактериальной терапии, приводя к хронизации инфекции у пораженных пациентов [10]. В таких случаях изоляты имеют большую тенденцию к устойчивости к макролидным антибиотикам в связи с присутствием белка F1, фактора вирулентности, поддерживающего интернализацию клеток хозяина [10]. С антибиотикорезистентностью при терапии инфекций, вызванных БГСА, врачи столкнулись более 20 лет назад. Исследования показали, что данный феномен связан с особенностями биопленки, которую образуют колонии БГСА [11]. Биопленки БГСА изучались в лакунах удаленных миндалин при тонзиллэктомии [12]. Планктонные бактерии посредством адгезии формируют микроколонии, передают друг другу информацию и объединяются во внеклеточном матриксе, состоящем из полимерных веществ, таких как белки, полисахариды и внеклеточная ДНК. Внутри матрикса бактериальная клетка подвергается значительному окислительному стрессу, что приводит к спонтанным мутациям и возникновению микробных субпопуляций.

Место и роль БГСА в этиологии ОТФ

Являясь исключительно человеческим патогеном, S. pyogenes передается от человека к человеку воздушно-капельным путем с коротким инкубационным периодом (2–5 дней) и наиболее распространен в детской популяции в возрасте 5–15 лет с пиком в 7–8 лет, провоцируя до 30% случаев ОТФ. Редко встречается в возрасте до 3 лет (хотя некоторые исследователи отмечают, что встречаемость БГСА в детской популяции до 5 лет растет в последние годы [13]) и еще реже — во взрослом возрасте (от 5 до 15% случаев ОТФ) [14]. Для подростков и взрослых более характерен фарингит, вызванный β-гемолитическим стрептококком групп С и G, он, как правило, не приводит к тяжелым последствиям, как при БГСА-инфекции [15]. Пик БГСА-ассоциированного ОТФ приходится на период декабрь — март в связи с особой скученностью детей в эти месяцы, учитывая более редкое нахождение на улице из-за холодной погоды. Частыми бывают вспышки ОТФ в школах [16].

Хоть БГСА является и самым распространенным бактериальным возбудителем ОТФ, данные симптомы могут также провоцировать другие бактерии, такие как Neisseria gonorrhoeae (возбудитель гонореи), Corynebacterium diphtheriae (возбудитель дифтерии), Fusobacterium necrophorum (возбудитель некробациллеза) и даже возбудитель орнитоза Chlamydophila psittaci. В последние десятилетия в связи с ростом распространенности данных инфекций встречаются ОТФ, вызванные Мycoplasma pneumoniae и Chlamydophila pneumoniae. Кроме того, в ряде случаев возбудитель (например, при смешанной анаэробной инфекции) остается нераспознанным [17]. Кроме вирусных (70–85%) и бактериальных (15–30%) причин развития ОТФ, некоторые исследователи также выделяют грибковые возбудители, за тем исключением, что Candida albicans (вызывающая 80% грибковых поражений ротоглотки) является частью нормальной микрофлоры и провоцирует развитие патологических процессов на фоне системного или местного иммунодефицита [18].

Последствия ОТФ, вызванного БГСА

Несмотря на то, что ОТФ обычно переносится достаточно легко и в случае вирусной инфекции является самоизлечимым заболеванием, при БГСА-ассоциированном ОТФ последствия могут быть крайне серьезными — острая ревматическая лихорадка (малая хорея может протекать изолированно), острый постстрептококковый гломерулонефрит (ОПСГН), постстрептококковый артрит, ревматическая болезнь сердца, PANDAS (PANS)-синдром (детские аутоиммунные нейропсихические расстройства, связанные со стрептококковой инфекцией), синдром стрептококкового токсического шока (в отличие от стафилококкового токсического шока, при стрептококковом токсическом шоке отмечается значительно более высокий уровень летальности). Известно, что последующие после БГСА-инфекции заболевания являются причиной более 500 000 летальных исходов ежегодно [19].

Острый постстрептококковый гломерулонефрит — наиболее частая причина острых нефритов у детей в мире. По данным 2021 г., ежегодная встречаемость ОПСГН составляет 472 тыс. случаев. Частота ОПСГН у детей варьирует от 5 до 10% при фарингите и 25% при кожных инфекциях. ОПСГН вызывается стрептококком группы А нефритогенного типа М. После перенесенного ОТФ наиболее распространенными нефритогенными типами являются 1, 3, 4, 12, 25 и 49, а при ОПСГН после кожной инфекции (например, импетиго) обычно встречаются типы 2, 49, 55, 57 и 60. После перенесенного ОТФ гломерулонефрит возникает в срок 1–3 нед., после кожной инфекции — 3–6 нед. [20].

Постстрептококковый реактивный артрит (ПСРА) — это полиартрит без кардита, ассоциирующийся с повышенными титрами антител к стрептолизину О в сыворотке крови, в год встречается 1–2 случая на 100 000 человек, что примерно в 2 раза больше, чем при острой ревматической лихорадке в США [21]. Суставные симптомы ПСРА включают персистирующий, немигрирующий острый артрит, который длится в среднем 2 мес. (от 1 нед. до 8 мес.), несмотря на применение нестероидных противовоспалительных средств (НПВС). Артрит при острой ревматической лихорадке обычно бывает острым и мигрирующим, улучшается в течение двух дней после начала лечения НПВС и имеет самокупирующееся течение [22].

PANDAS (PANS)-синдром — «педиатрические аутоиммунные нейропсихиатрические расстройства, связанные со стрептококковыми инфекциями», позже сформулированные более широко как «детский психоневрологический синдром с острым началом», — впервые был определен в 1998 г., однако споры по поводу связи данного синдрома со стрептококковой инфекцией ведутся вплоть до настоящего времени. В 2016–2017 г. было проведено два крупных когортных исследования в Тайване [23] и Дании [24], продемонстрировавшие более высокий шанс развития обсессивно-компульсивного расстройства, тиков и «психических расстройств» после стрептококкового ОТФ или других инфекций дыхательных путей [25].

Принимая во внимание вышеперечисленные осложнения, которые могут возникнуть при бактериальном ОТФ, становится понятной важность своевременной и точной диагностики вирусного и бактериального ОТФ с назначением необходимого лечения, в том числе антибактериальной терапии.

Клинические проявления и дифференциальная диагностика ОТФ

Симптомы как при вирусном, так и при стрептококковом ОТФ очень схожи: пациент может жаловаться на боль в горле с острым началом, боль при глотании, повышение температуры тела до фебрильных цифр. Также могут быть жалобы на головную боль, тошноту, рвоту, боль в животе. При непосредственном физикальном обследовании (фарингоскопии) может наблюдаться увеличение небных миндалин, тонзиллофарингеальная эритема с экссудатом (белого, желтого, сероватого цвета) или без него, болезненный при пальпации лимфаденит шейных и подчелюстных лимфатических узлов. Может наблюдаться увулит, петехии на небе, скарлатиноподобная сыпь. При вирусном ОТФ чаще наблюдаются характерные для вирусной инфекции симптомы, такие как насморк, кашель, осиплость голоса, конъюнктивит, но их наличие не исключает БГСА-инфекцию (хотя наблюдается примерно у 10% пациентов при БГСА-ассоциированном ОТФ). Не выявлено клинических признаков, характерных только для БГСА-инфекции; так, при инфекционном мононуклеозе наблюдается боль в горле, лимфаденопатия и фебрильная лихорадка, при этом у трети пациентов выявляются тонзиллофарингеальная эритема с экссудатом и петехии на небе, ранее считавшиеся признаками БГСА-инфекции. Под инфекционный мононуклеоз, вызванный вирусом Эпштейн — Барр, может мимикрировать первичная ВИЧ-инфекция, проявляясь ОТФ, субфебрильной лихорадкой, потерей массы тела и диффузной лимфаденопатией [17].

Важно уже при первом контакте с пациентом с болью в горле, особенно невербальном, оценивать «красные флаги» — такие симптомы, как дисфагия, слюнотечение, односторонний отек шеи. Необходимо исключить требующие неотложной помощи состояния — эпиглоттит, подчелюстной/паратонзиллярный абсцесс (увеличение миндалин при ОТФ происходит симметрично, в отличие от состояния при паратонзиллярном абсцессе), поэтому телемедицинская консультация у пациентов с болью в горле не рекомендуется, так как в таком случае невозможен непосредственный осмотр.

Чрезвычайно важной видится необходимость дифференцировать причины ОТФ для предотвращения назначения антибактериальной терапии пациентам, не нуждающимся в ней, с целью снижения: антибиотикорезистентности, осложнений от неоправданного назначения антибиотика, нагрузки на систему здравоохранения (неоправданные гос-питализации, поздние осложнения, стоимость терапии).

Итак, дифференциальная диагностика ОТФ вирусной или БГСА-этиологии только на основании определения клинической картины «у постели больного» представляется затруднительной. Были предложены несколько таблиц для дифференциальной диагностики вирусной и стрептококковой причин ОТФ, однако в клиническую практику наиболее широко вошли шкалы Centor и McIssac.

По шкале Centor при сумме баллов 0–1 риск БГСА-инфекции считается низким, и не требуется дополнительного обследования или антибактериальной терапии. При сумме 2–3 балла требуется лабораторное подтверждение наличия БГСА для начала антибактериальной терапии. При 4 баллах Американский колледж врачей рекомендует начинать лечение, в отличие от рекомендаций Американского общества инфекционистов, требующих дополнительного лабораторного подтверждения [14]. Шкала McIssac уточняет шкалу Centor для назначения антибактериальной терапии. В некоторых исследованиях [26] утверждалось, что шкала McIssac имеет высокую чувствительность и специфичность (около 90%), однако другие исследования продемонстрировали недостаток данных алгоритмов для постановки диагноза БГСА-инфекции — возможной причиной такого расхождения данных называют привлечение детей с тяжелыми симптомами либо увеличение частоты вирусных инфекций, протекающих с теми же симптомами [27].

Учитывая вышеперечисленные особенности дифференциальной диагностики на основании клинических данных, становится очевидной необходимость быстрой, дешевой и точной лабораторной диагностики. В настоящее время существует два основных метода лабораторного определения БГСА: культуральное исследование мазка с задней стенки глотки и экспресс-тест для определения антигенов стрептококка группы А в мазке с задней стенки глотки. Определение антител к стрептолизину О не рекомендуется в рутинной практике (кроме подозрений на постстрептококковые осложнения), как и определение маркеров воспаления (СРБ, прокальцитонин). Клинический анализ крови проводится при госпитализации в стационар и/или подозрении на инфекционный мононуклеоз.

Экспресс-тестирование — «золотой стандарт» диагностики БГСА-инфекции

Хотя культуральное исследование обладает высокой чувствительностью и специфичностью, оно, как и любой посев, требует определенного количества времени (24–48 ч, при определении чувствительности к антибиотикам вплоть до 7 дней) для подготовки и разрастания культуры на кровяном агаре, что замедляет диагностику и лечение. Становится очевидным преимущество экспресс-тестов, которые могут проводиться и «у постели больного», и на первичном приеме, не требуют специально обученного персонала, а результаты бывают доступны менее чем через 10 мин. Существует 3 типа экспресс-тестов: латекс-агглютинация, иммуноферментный анализ и оптический иммуноанализ. Систематические обзоры и метаанализы дают оценку чувствительности экспресс-тестов около 85% и специфичности — 90–96% [28].

Попытки создать экспресс-тесты отмечались с 50-х годов прошлого века, а первые коммерчески доступные экспресс-тесты начали появляться с 1990-х годов, и к настоящему времени существует около 20 торговых наименований различных экспресс-тестов. Они различаются по чувствительности и специфичности. Отдельное влияние на чувствительность оказывает правильная техника мазка (с задней части глотки, миндалин, а не языка, губ или внутренней поверхности щек), хотя даже ученики средней школы продемонстрировали способность правильно выполнять экспресс-тест после короткого инструктажа [29].

Итак, если симптомы указывают на возможность БГСА-инфекции, то следует провести посев из зева или экспресс-тестирование. Любой из этих тестов должен быть проведен до начала антибактериальной терапии, поскольку даже один прием препарата может исказить результаты анализа. Экспресс-тест позволяет обнаружить антигены БГСА в мазке с очень высокой степенью достоверности. Положительный результат однозначно указывает на присутствие БГСА в образце мазка и на фоне антибактериальной терапии свидетельствует об отсутствии эрадикации возбудителя в момент проведения теста. Несоблюдение инструкции не может стать причиной положительного результата, за исключением случаев контаминации, что на практике сложно осуществимо при отсутствии контакта с возбудителем. При положительных результатах экспресс-теста нецелесообразно проводить культуральное исследование из-за высокой специфичности экспресс-диагностики БГСA-инфекции. При отрицательных результатах экспресс-теста у взрослых пациентов проводить культуральное исследование не требуется в связи с низкой частотой встречаемости БГСA-тонзиллофарингита и низким риском последующего развития ревматической лихорадки у данной категории пациентов. Отрицательный результат экспресс-теста у детей и подростков с подозрением на ОТФ, вызванный БГСA, следует подтвердить культуральным исследованием. Детей в возрасте до 3 лет необходимо тестировать только при наличии осложненного анамнеза (например, при подтвержденном БГСА у старших сиблингов). В Российской Федерации данный алгоритм утвержден в последней редакции клинических рекомендаций «Острый тонзиллит и фарингит (острый тонзиллофарингит)».

Самым доступным на территории Российской Федерации экспресс-тестом является «Стрептатест^®», предназначенный для быстрого выявления или дифференциальной диагностики БГСА при ОТФ. Чувствительность теста составляет 97% (96% доверительный интервал (ДИ) 91–99%), специфичность — 95% (96% ДИ 92–97%). Положительное прогнозируемое значение — 86% (96% ДИ 79–91%), отрицательное — 99% (96% ДИ 97–100%) по сравнению с культуральным исследованием [30]. Мембрана «Стрептатеста» покрыта моноклональными антителами, распознающими антигены стрептококка группы А. Применение «Стрептатеста» позволяет получить результат в течение 5 мин, а за счет достаточно низкой стоимости и широкой доступности метод может применяться как в условиях дома, детского сада или школы, так и медицинскими работниками поликлинического и стационарного звена. Возможность самостоятельно проводить экспресс-тестирование в домашних условиях позволяет снижать уровень родительской тревоги при уходе за ребенком и в части случаев предотвращать самостоятельное назначение антибактериальной терапии.

При подтверждении БГСА-ассоциированного ОТФ с помощью экспресс-теста или культурального исследования требуется обязательное назначение антибактериальной терапии. Препаратом выбора являются пенициллины, при аллергии на пенициллин используются цефалоспорины I–II поколения. Пероральный или внутримышечный пенициллин все еще является эффективным средством эрадикации БГСА, однако данные некоторых исследований свидетельствуют о не-удовлетворительном результате антибактериальной терапии в некоторых случаях стрептококкового ОТФ [31]. К причинам неэффективности антибактериальной терапии относятся неправильный подбор дозировки, несоблюдение необходимых сроков терапии не менее 10 дней (при БГСА-ассоциированном ОТФ улучшение наступает к 2–4-му дню, что побуждает пациентов или родителей пациентов думать, что терапия им больше не требуется), возможность повторного инфицирования от окружения и окружающих предметов (зубная щетка, брекеты), недостаточное проникновение метаболитов пенициллина в эпителиальные ткани миндалин, дисбиоз полости рта, когда симбиотическая флора не способна препятствовать размножению БГСА [31, 32]. Взаимодействие БГСА и бактериальной флоры миндалин также может снижать эффективность антибактериальной терапии: бактерии, колонизирующие глотку и миндалины, вырабатывают фермент β-лактамаза, инактивирующий противомикробное действие пенициллина, а сочетание Moraxella catarrhalis и БГСА усиливает колонизацию БГСА [33]. Повторные курсы пенициллина приводят к дисбиозу полости рта, способствуя размножению продуцирующих β-лактамы штаммов S. aureus, Haemophilus spp., M. catarrhalis, Fusobacterium spp., Porphyromonas spp., Bacteroides spp. [34].

Кроме обязательного назначения антибактериальных препаратов часто требуется назначить сопутствующую терапию: НПВС для снижения температуры тела и облегчения болевого синдрома. Местное лечение может использоваться с 4 лет и включает в себя пастилки для рассасывания, спреи и таблетки для полоскания¹. Важно помнить, что при вирусном фарингите необходима только поддерживающая терапия и не требуется назначение антибиотиков. Пациенты и родители пациентов, настаивающие на антибактериальной терапии, связывают свои ожидания не с непосредственно противомикробным эффектом терапии, а с быстрым облегчением болезненного состояния. Это дополнительно доказывает важность связки «врач — пациент», построенной на достаточном количестве информации и доверии, без которых невозможна полная комплаентность.

Заключение

Таким образом, острый стрептококковый тонзиллофарингит встречается довольно часто, имеет значительные по тяжести осложнения, а антибактериальная терапия должна назначаться только после подтверждения БГСА-этиологии. Одним из самых удобных, недорогих, одобренных российскими клиническими рекомендациями способов подтверждения БГСА-этиологии ОТФ является экспресс-тестирование, которое позволяет получить результат в течение 5–10 мин. Экспресс-диагностическая тест-система «Стрептатест^®» — эффективный и надежный, простой в применении метод, для использования которого не требуется дополнительно обучать медицинский персонал. Результаты экспресс-теста «Стрептатест^®» позволяют свое-временно и адекватно назначить необходимое пациенту лечение.

¹Клинические рекомендации. Острый тонзиллит и фарингит (острый тонзиллофарингит). 2021. (Электронный ресурс) URL: https://cr.minzdrav.gov.ru/recomend/306_2?ysc lid=lfgv427rjq790334060 (дата обращения: 12.01.2023) .

1. Dooling K.L., Shapiro D.J., Van Beneden C. et al Overprescribing and inappropriate antibiotic selection for children with pharyngitis in the United States, 1997-2010. JAMA Pediatr. 2014;168(11):1073–1074. DOI: 10.1001/jamapediatrics.2014.1582.
2. Lancefield R.C. A serological differentiation of human and other groups of hemolytic streptococci. J Exp Med. 1933;57(4):571–595. DOI: 10.1084/jem.57.4.571.
3. O’Hern E.M. Rebecca Craighill Lancefield, Pioneer Microbiologist. ASM News. 1975;41(1):805–810.
4. Carapetis J.R., Steer A.C., Mulholland E.K., Weber M. The global burden of group A streptococcal diseases. Lancet Infect Dis. 2005;5(11):685–694. DOI: 10.1016/S1473-3099(05)70267-X.
5. Jespersen M.G., Lacey J.A., Tong S.Y.C., Davies M.R. Global genomic epidemiology of Streptococcus pyogenes. Infect Genet Evol. 2020;86:104609. DOI: 10.1016/j.meegid.2020.104609.
6. Fiedler T., Köller T., Kreikemeyer B. Streptococcus pyogenes biofilms-formation, biology, and clinical relevance. Front Cell Infect Microbiol. 2015;5:15. DOI: 10.3389/fcimb.2015.00015.
7. Akiyama H., Morizane S., Yamasaki O. et al. Assessment of Streptococcus pyogenes microcolony formation in infected skin by confocal laser scanning microscopy. J Dermatol Sci. 2003;32(3):193–199. DOI: 10.1016/s0923-1811(03)00096-3.
8. Kreikemeyer B., McIver K.S., Podbielski A. Virulence factor regulation and regulatory networks in Streptococcus pyogenes and their impact on pathogen-host interactions. Trends Microbiol. 2003;11(5):224–232. DOI: 10.1016/s0966-842x(03)00098-2.
9. Baldassarri L., Creti R., Recchia S. et al. Therapeutic failures of antibiotics used to treat macrolide-susceptible Streptococcus pyogenes infections may be due to biofilm formation. J Clin Microbiol. 2006;44(8):2721–2727. DOI: 10.1128/JCM.00512-06.
10. Facinelli B., Spinaci C., Magi G. et al. Association between erythromycin resistance and ability to enter human respiratory cells in group A streptococci. Lancet. 2001;358(9275):30–33. DOI: 10.1016/s0140-6736(00)05253-3.
11. Conley J., Olson M.E., Cook L.S. et al. Biofilm formation by group a streptococci: is there a relationship with treatment failure? J Clin Microbiol. 2003;41(9):4043–4048. DOI: 10.1128/JCM.41.9.4043-4048.2003.
12. Roberts A.L., Connolly K.L., Kirse D.J. et al. Detection of group A Streptococcus in tonsils from pediatric patients reveals high rate of asymptomatic streptococcal carriage. BMC Pediatr. 2012;12:3. DOI: 10.1186/1471-2431-12-3.
13. Espadas Maciá D., Flor Macián E.M., Borrás R. et al. Infección por estreptococo pyogenes en la edad pediátrica: desde faringoamigdalitis aguda a infecciones invasivas [Streptococcus pyogenes infection in paediatrics: from pharyngotonsillitis to invasive infections]. An Pediatr (Engl Ed). 2018;88(2):75–81 (in Spanish). DOI: 10.1016/j.anpedi.2017.02.011.
14. Shulman S.T., Bisno A.L., Clegg H.W. et al. Clinical practice guideline for the diagnosis and management of group A streptococcal pharyngitis: 2012 update by the Infectious Diseases Society of America. Clin Infect Dis. 2012;55(10):e86–e102. DOI: 10.1093/cid/cis629.
15. Centor R.M. Adolescent and adult pharyngitis: more than «strep throat»: comment on "Large-scale validation of the Centor and McIsaac Scores to predict group A streptococcal pharyngitis". Arch Intern Med. 2012;172(11):852–853. DOI: 10.1001/archinternmed.2012.1741.
16. Shaikh N., Leonard E., Martin J.M. Prevalence of streptococcal pharyngitis and streptococcal carriage in children: a meta-analysis. Pediatrics. 2010;126(3):e557–e564. DOI: 10.1542/peds.2009-2648.
17. Weber R. Pharyngitis. Prim Care. 2014;41(1):91–98. DOI: 10.1016/j.pop.2013.10.010.
18. Орлова Ю.Ю. Современная этиопатогенетическая терапия острого фарингита. Ремедиум Приволжье. 2015;4(134):43–46. [Orlova Yu.Yu. Modern etiopathogenetic therapy of acute pharyngitis. Remedium Privolzh’ye. 2015;4(134):43–46 (in Russ.)].
19. Steer A.C., Danchin M.H., Carapetis J.R. Group A streptococcal infections in children. J Paediatr Child Health. 2007;43(4):203–213. DOI: 10.1111/j.1440-1754.2007.01051.x.
20. Alhamoud M.A., Salloot I.Z., Mohiuddin S.S. et al. A Comprehensive Review Study on Glomerulonephritis Associated With Post-streptococcal Infection. Cureus. 2021;13(12):e20212. DOI: 10.7759/cureus.20212.
21. lsaeid K., Uziel Y. Acute rheumatic fever and poststreptococcal reactive arthritis. In: Textbook of pediatric rheumatology. Petty R.E., Laxer RM., Lindsley C.B., Wedderburn L.R., eds. 7th ed. Philadelphia, PA: Saunders Elsevier; 2015:571–85.e4.
22. Barash J., Mashiach E., Navon-Elkan P. et al. Differentiation of post-streptococcal reactive arthritis from acute rheumatic fever. J Pediatr. 2008;153(5):696–699. DOI: 10.1016/j.jpeds.2008.05.044.
23. Wang H.C., Lau C.I., Lin C.C. et al. Group A Streptococcal Infections Are Associated With Increased Risk of Pediatric Neuropsychiatric Disorders: A Taiwanese Population-Based Cohort Study. J Clin Psychiatry. 2016;77(7):e848–e854. DOI: 10.4088/JCP.14m09728.
24. Orlovska S., Vestergaard C.H., Bech B.H. et al. Association of Streptococcal Throat Infection With Mental Disorders: Testing Key Aspects of the PANDAS Hypothesis in a Nationwide Study. JAMA Psychiatry. 2017;74(7):740–746. DOI: 10.1001/jamapsychiatry.2017.0995.
25. Wilbur C., Bitnun A., Kronenberg S. et al. PANDAS/PANS in childhood: Controversies and evidence. Paediatr Child Health. 2019;24(2):85–91. DOI: 10.1093/pch/pxy145.
26. McIsaac W.J., Goel V., To T., Low D.E. The validity of a sore throat score in family practice. CMAJ. 2000;163(7):811–815. PMID: 11033707.
27. Stefaniuk E., Bosacka K., Wanke-Rytt M., Hryniewicz W. The use of rapid test QuikRead go® Strep A in bacterial pharyngotonsillitis diagnosing and therapeutic decisions. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2017;36(10):1733–1738. DOI: 10.1007/s10096-017-2986-8.
28. Cohen J.F., Bertille N., Cohen R., Chalumeau M. Rapid antigen detection test for group A streptococcus in children with pharyngitis. Cochrane Database Syst Rev. 2016;7(7):CD010502. DOI: 10.1002/14651858.CD010502.pub2.
29. Ferris D.G., Fischer P.M. Elementary school students’ performance with two ELISA test systems. JAMA. 1992;268(6):766–770. PMID: 1640577.
30. Жарков Д.А., Кузин А.А., Свистунов С.А. и др. Экспресс-диагностика стрептококковых тонзиллитов в эпидемиологической практике. Журнал инфектологии. 2017;9(4):102–108. [Zharkov D.A., Kuzin A.A., Svistunov S.A. et al. Rapid diagnosis of streptococcal tonsillitis in epidemiological practices. Journal Infectology. 2017;9(4):102–108 (in Russ.)]. DOI: 10.22625/2072-6732-2017-9-4-102-108.
31. Kaplan E.L., Chhatwal G.S., Rohde M. Reduced ability of penicillin to eradicate ingested group A streptococci from epithelial cells: clinical and pathogenetic implications. Clin Infect Dis. 2006;43(11):1398–1406. DOI: 10.1086/508773.
32. Hagman M.M., Dale J.B., Stevens D.L. Comparison of adherence to and penetration of a human laryngeal epithelial cell line by group A streptococci of various M protein types. FEMS Immunol Med Microbiol. 1999;23(3):195–204. DOI: 10.1111/j.1574-695X.1999.tb01239.x.
33. Lafontaine E.R., Wall D., Vanlerberg S.L. et al. Moraxella catarrhalis coaggregates with Streptococcus pyogenes and modulates interactions of S. pyogenes with human epithelial cells. Infect Immun. 2004;72(11):6689–6693. DOI: 10.1128/IAI.72.11.6689-6693.2004.
34. Brook I. Treatment Challenges of Group A Beta-hemolytic Streptococcal Pharyngo-Tonsillitis. Int Arch Otorhinolaryngol. 2017;21(3):286–296. DOI: 10.1055/s-0036-1584294.