28
лет
предоставляем актуальную медицинскую информацию от ведущих специалистов, помогая врачам в ежедневной работе
28
лет
предоставляем актуальную медицинскую информацию от ведущих специалистов, помогая врачам в ежедневной работе
28
лет
предоставляем актуальную медицинскую информацию от ведущих специалистов, помогая врачам в ежедневной работе
Новая фармаконутрицевтическая композиция для антиген-специфической профилактики и вспомогательной терапии костно-мышечных заболеваний
string(5) "75053"
1
ООО «МЦ «Новомедицина», Ростов-на-Дону, Россия
2
ФГБНУ НИИР им. В.А. Насоновой, Москва, Россия
3
ФГБОУ ВПО РМАНПО Минздрава России, Москва
4
ФИЦ ИУ РАН, Москва, Россия

В статье обсуждаются современные возможности применения новой фармаконутрицевтической композиции, включающей хондроитина сульфат, глюкозамина сульфат и неденатурированный коллаген II типа с учетом новых молекулярных данных о патогенезе заболевания, а также данных о механизме действия, особенностях фармакокинетики, эффективности и безопасности каждого из компонентов фармаконутрицевтика. Особое внимание уделено механизмам индукции оральной толерантности, лежащим в основе разработки целевой антиген-специфической профилактики и вспомогательной терапии остеоартрита (ОА), взаимодействию компонентов нового фармаконутрицевтика с иммунной системой при ОА. Показана перспективность разработки и внедрения новых фармаконутрицевтиков вследствие широкого распространения заболеваний, связанных с дегенерацией хрящевой ткани и нарушением функционального состояния опорно-двигательного аппарата, с одной стороны, и недостаточной эффективностью известных симптоматических лекарственных средств замедленного действия — с другой. Обсуждаются возможности ведения пациентов с ОА на основе данных клинических исследований и с учетом современных возможностей персонализированной фармаконутрицевтической поддержки.

Ключевые слова: остеоартрит, хондроитина сульфат, глюкозамина сульфат, неденатурированный коллаген II типа, фармаконутрицевтики, оральная толерантность.

New composition of pharmaceutical nutraceutical for antigen-specific prevention and adjunctive therapy of musculoskeletal diseases

I.V. Sarvilina1, A.M. Lila2,3, O.A. Gromova4,5 

1Medical Center «Novomedicina» LLC, Rostov-on-Don

2V.A. Nasonova Research Institute of Rheumatology, Moscow

3Russian Medical Academy of Continuous Professional Education, Moscow

4Federal Research Center «Informatics and Management» of the Russian Academy of Science, Moscow

5Lomonosov Moscow State University, Moscow 

The article discusses the current possibilities of using a new composition of pharmaceutical nutraceutical agent, including chondroitin sulfate, glucosamine sulfate and undenatured type II collagen, given the new molecular data on the disease pathogenesis, as well as data on the mechanism of action, pharmacokinetics, efficacy and safety of each of the pharmaceutical nutraceutical components. Special attention is paid to the mechanisms for induction of oral tolerance underlying the development of targeted antigen-specific prevention and adjunctive therapy of osteoarthritis (OA), as well as the interaction of the pharmaceutical nutraceutical components with the immune system in OA. The article shows prospects for the development and administration of new pharmaceutical nutraceuticals due to the widespread prevalance of diseases associated with cartilage degeneration and musculoskeletal system disorder, on the one hand, and the insufficient efficacy of known symptomatic drugs of sustained release, on the other hand. The article also discusses the modern possibilities of patient management with OA based on clinical research data and individual pharmaceutical nutraceutical support.

Keywords: osteoarthritis, chondroitin sulfate, glucosamine sulfate, undenatured type II collagen, pharmaceutical nutraceuticals, oral tolerance.

For citation: Sarvilina I.V., Lila A.M., Gromova O.A. New composition of pharmaceutical nutraceutical for antigen-specific prevention and adjunctive therapy of musculoskeletal diseases. RMJ. 2023;2:44–50.

Для цитирования: Сарвилина И.В., Лила А.М., Громова О.А. Новая фармаконутрицевтическая композиция для антиген-специфической профилактики и вспомогательной терапии костно-мышечных заболеваний. РМЖ. 2023;2:44-50.

Введение

В настоящее время отмечается рост распространенности остеоартрита (ОА), которым, по разным оценкам, страдает примерно 7% людей в мире [1]. ОА коленного и тазобедренного суставов находятся на 11-м месте в мире по количеству людей с инвалидностью и на 38-м месте по показателю «число лет жизни с поправкой на инвалидность» [2, 3]. В общей структуре ревматологических заболеваний в РФ доля ОА составляет 45–49% [4]. В США экономические затраты на ведение пациентов с ОА превышают 65 млрд долларов [5].

Как показывают результаты различных популяционных исследований, факторами риска развития ОА являются пожилой возраст, возраст старше 45 лет у женщин, травмы суставов в анамнезе, избыточная масса тела и ожирение, биомеханические изменения в суставе, предрасположенность на генетическом уровне [6, 7]. В ходе ряда исследований было доказано, что боль и скованность в суставе после выполнения интенсивных физических упражнений являются следствием начинающегося воспаления в суставных тканях [8–10]. Показано, что цитокины, участвующие в реализации звеньев патогенеза ОА, также способствуют ремоделированию экстрацеллюлярного матрикса (ЭЦМ) суставов здоровых лиц после интенсивной физической нагрузки [11].

Боль различной интенсивности (от легкой до выраженной) и скованность при движении негативно влияют на качество жизни пациентов с ОА [12, 13]. Основными причинами развития клинических симптомов при первичном ОА считаются микротравмы, предшествовавшие манифестации заболевания [14].

Остеоартрит — дегенеративно-дистрофическое заболевание суставов, в основе которого лежит воспаление в тканях суставов коленей, стоп, бедер, позвоночника с вовлечением субхондральной кости, синовиальных оболочек и околосуставных тканей [15]. Дегенеративно-дистрофические процессы в суставном хряще связаны с изменением метаболизма хондроцитов и синовиоцитов, нарушением восстановления хрящевого матрикса [16–18].

Современное лечение ОА предполагает применение безрецептурных анальгетиков, нестероидных противовоспалительных препаратов (НПВП), внутрисуставное введение кортикостероидов или гиалуроновой кислоты, прием трамадола, опиоидных анальгетиков для облегчения боли. Вышеперечисленные способы лечения обеспечивают кратковременное облегчение симптомов ОА с небольшой длительностью их действия на патогенез ОА при регистрируемых нежелательных явлениях (НЯ) [19–22]. В связи с этим в настоящее время большой интерес вызывают альтернативные методы лечения ОА, в том числе с использованием биологически активных добавок (нутрицевтики) [23, 24].

Одними из наиболее часто применяемых при ОА нутрицевтиков для уменьшения выраженности боли являются глюкозамина сульфат (ГС) и хондроитина сульфат (ХС) [25–27]. Эффективность высокоочищенного ХС подтверждена максимальным уровнем убедительности рекомендаций A и достоверности доказательств 1 [28], в том числе при парентеральном введении (Хондрогард®) [29]. Механизм действия ХС и ГС связан с улучшением метаболизма протеогликанов и соотношения анаболических и катаболических процессов в ЭЦМ, снижением интенсивности резорбтивных процессов в субхондральной кости [30–33]. Имеющиеся на сегодняшний день данные о применении пероральных форм ГС и ХС позволяют отнести их к группе фармаконутрицевтиков, применяющихся для профилактики, вспомогательной терапии и поддержки функциональной активности костно-мышечной системы человека.

Коллаген — самый распространенный компонент суставного хряща — и его производные отнесены к группе соединений с болезньмодифицирующим эффектом при ОА (disease-modifying osteoarthritis drug, DMOAD) [34, 35]. В клинических исследованиях показаны эффективность и безопасность неденатурированного коллагена II типа (НК-II) при ОА коленного сустава (КС) боли в нижней части спины [36–38]. Вызывая иммунную толерантность и оказывая симптоматическое и структурное влияние на суставной хрящ, НК-II представляется новой альтернативой для профилактики и вспомогательного лечения ОА.

Целью настоящего обзора является анализ и обсуждение возможностей применения новой фармаконутрицевтической композиции ХондрогардТРИО1, включающей ХС (1200 мг), ГС (150 мг) и НК-II (40 мг), для профилактики и вспомогательной терапии ОА на основе новых данных о патогенезе заболевания, механизме действия, особенностях фармакокинетики, эффективности и безопасности каждого из компонентов фармаконутрицевтика.

Современные данные о механизме развития ОА

Наши знания о механизме развития ОА пополнились новыми данными о структуре и функции суставного хряща, представленного в организме человека в трех формах: волокнистый, эластический и гиалиновый хрящ [39]. Как известно, суставной хрящ состоит из воды и ЭЦМ, в составе которого присутствует коллаген в объеме 75% сухой массы и протеогликаны в объеме 20–30% сухой массы. У здорового человека больше всего коллагена содержится в поверхностной зоне хряща, в средней и глубокой зонах хряща его доля ниже на 20%. В свою очередь, протеогликаны характеризуются низким содержанием в поверхностной зоне и увеличением содержания в 2 раза в средней и глубокой зонах хряща. Обнаружены разные фенотипы хондроцитов в поверхностной, средней, глубокой и кальцифицированной зонах [39, 40]. Следует помнить, что структурное разрушение и нарушение функции суставного хряща после травмы или при ОА практически не сопровождается последующей его регенерацией вследствие низкой пролиферативной активности хондроцитов и отсутствия кровоснабжения [41–44].

Считается, что гиалиновый хрящ более чем на 90% состоит из коллагена II типа, гораздо меньше в нем содержится коллагена типов III (около 10%), IX (1%), XI (3%) и VI (<1%) [45]. Структурно в разных типах коллагена различают неспиральные терминальные домены и центральное ядро, включающее повторяющиеся аминокислотные последовательности с глицином, пролином и гидроксипролином [46, 47].

Неколлагеновые элементы основного вещества ЭЦМ включают гликозаминогликаны (ГАГ), протеогликаны и гликопротеины. ГАГ основного вещества ЭЦМ образуют 6 субъединиц в суставном хряще: ХС 4 и 6, кератан-сульфат, дерматан-сульфат, гепаран-сульфат и гиалуроновая кислота. ГАГ поддерживают механические свойства и гидратацию ЭЦМ [48]. Самый большой мультимолекулярный комплекс с гиалуроновой кислотой формирует аггрекан, в котором кератан-сульфат и ХС стабилизируются связующими белками [49, 50]. В ЭЦМ также представлены версикан, бигликан, декорин, фибромодулин, люмикан [51], перлекан [52], лубрицин [53]. Большое количество других неколлагеновых белков ЭЦМ сустава условно формируют две группы в зависимости от функции: структурные (олигомерный белок хряща, тромбоспондины 1 и 3, матрилины 1 и 3, фибронектин, тенасцин С и белок промежуточного слоя хряща) и регуляторные белки клеточного метаболизма (гликопротеин хряща 39, остеокальцин, хондромодулин I и II, ретиноевая кислота, кислоточувствительный белок, трансформирующий фактор роста β (ТФР-β) и костные морфогенетические белки) [49]. Авторы исследований in vitro и in vivo показали роль хондроцитов в регуляции продукции ЭЦМ и гомеостаза хряща, а также подтвердили тот факт, что травма или дегенеративно-дистрофический процесс в хряще приводят к гипертрофии хондроцитов с нарушенной экспрессией провоспалительных и катаболических генов [54–56]. В экспериментальных работах показано, что хондроциты синтезируют протеиназы, которые разрушают компоненты ЭЦМ (матриксные металлопротеиназы (ММП), расщепляющие коллаген и протеогликаны, дезинтегрин-металлопротеиназы с мотивом тромбоспондина (ADAMTS), эластазы, катепсины).

Механизм развития ОА связан с активацией во всех суставных тканях провоспалительных цитокинов — интерлейкина (ИЛ) 1β и фактора некроза опухоли α (ФНО-α) с высвобождением простагландинов, оксида азота, циклооксигеназы и ММП-27, других провоспалительных цитокинов (ИЛ-6, 8, 17, 18) [57–60]. ТФР-β регулирует трансформацию мезенхимальных клеток в клетки хондрогенного ряда, гомеостаз в субхондральной кости, при этом его высокий уровень усиливает дегенеративно-дистрофические процессы в суставном хряще при ОА [61]. При ОА регистрируют очень высокие уровни ММП-13, ответственной за разрушение коллагена II типа и аггрекана. В числе других ММП, участвующих в деградации коллагена, — ММП-2, 3, 9 [62].

Доказано, что фенотип хондроцитов определяется прежде всего характером окружающей среды [63, 64], при этом гипертрофированные хондроциты, являющиеся конечной стадией дифференцировки, выступают важным патогенетическим фактором развития ОА. Установлено, что снижение синтеза коллагена II типа приводит к повышению активности в системе «костный морфогенетический белок (BMP) — сигнальный путь SMAD1», следствием чего является ускорение гипертрофии хондроцитов. Таким образом, снижение содержания коллагена II типа может способствовать развитию дегенеративных изменений в суставном хряще, характерных для ОА, из-за нарушения процесса ингибирования гипертрофии хондроцитов [65].

Механизмы индукции оральной толерантности как основы целевой профилактики и вспомогательной терапии ОА

В основе развития оральной толерантности как физиологической реакции подавления активности иммунной системы пероральными антигенами лежат местные и системные эффекты с участием индуцированных регуляторных Т-клеток (iTregs) слизистой оболочки [66]. Накопленные на сегодняшний день данные свидетельствуют о том, что пероральное введение специфических антигенов можно использовать для профилактики и контроля хронических воспалительных заболеваний. В частности, в эксперименте показано, что коллаген, выступая в роли аутоантигена, предотвращает развитие артрита [67]. В настоящее время оральную толерантность рассматривают в контексте антиген-специфической пероральной иммунотерапии [68].

Рассмотрим ключевые звенья механизма индукции оральной толерантности.

Пероральное введение аутоантигена предполагает большую по площади контактную поверхность со слизистой оболочкой кишечника и иммунорегуляторными клетками [69, 70]. Лимфоидная ткань, связанная с кишечником (gut-associated lymphoid tissues, GALT), содержит около 1012 иммунных клеток, которые контактируют со множеством антигенов в условиях сопутствующей активности комменсалов толстой кишки [71, 72]. Клетки иммунной системы слизистой оболочки кишечника функционируют в адаптивном режиме, который предполагает выполнение постоянной дифференциации между естественной стимуляцией антигенами и удалением патогенов аутохтонной микробиотой. Относительно большие скопления GALT формируют пейеровы бляшки [73], а «куполообразный» эпителий, располагающийся над ними, содержит интраэпителиальные лимфоциты и эпителиальные клетки, часть из которых имеет микроскладки (М-клетки). М-клетки транспортируют антиген из просвета кишечника в пейеровы бляшки, где формируется иммунный ответ в слизистой оболочке через активацию предшественников В-лимфоцитов и клеток памяти. Активированные лимфоциты попадают в кровоток через грудной лимфатический проток, в результате чего регистрируется не только локальный, но и системный эффект оральной толерантности [74].

Согласно [75] для лимфатических узлов (ЛУ) тонкой кишки характерна высокая экспрессия Foxp3+Tregs, имеющих происхождение из тимуса, и толерогенных дендритных клеток (ДК) в собственной пластинке и проксимальных ЛУ, синтезирующих большие количества ретиноевой кислоты, TGF-β и характеризующихся высокой экспрессией гена — члена А2 семейства 1 альдегид-дегидрогеназ (Aldh1А2). Синтез ретиноевой кислоты ДК при участии Т-клеток в присутствии TGF-β индуцирует экспрессию CCR9 и α4β7, способствует трасформации наивных Т-клеток в Foxp3+iTregs (белок Forkhead box p3-индуцированные регуляторные T-клетки), которые, в свою очередь, останавливают дифференцировку TGF-β-зависимых клеток Th17. Поглощение антигена происходит посредством транспорта через М-клетки в пейеровых бляшках с помощью ДК, которые захватывают антиген, связанный с бокаловидными клетками, через эпителиальные ворсинки клеток или после переноса антигена из макрофагов CX3CR1. Клетки CCR7+CD103+DC более эффективны в индукции iTregs и толерантности при миграции к ЛУ, несущим антигены. Присутствие TGF-β индуцирует латентно-ассоциированный пептид LAP+Treg под действием интегрина αvβ8. Антигены комменсальной микробиоты транспортируются ДК в ЛУ для активации iTregs. Секреторный иммуноглобулин А (SIgA), секретируемый плазмоцитами и присутствующий в слизи, блокирует адгезию бактерий-комменсалов и патогенов на кишечный эпителий и нейтрализует токсины и бактериальные липополисахариды. Считают, что механизм запуска системных реакций со стороны iTregs в ЛУ связан с тем, что клетки экспрессируют рецепторы самонаведения (α4β7 и хемокиновые рецепторы), которые стимулируют направленное движение иммунных клеток в пределах слизистой кишечника и к тканям с очагами воспаления в организме человека [75].

Клинические исследования доказали наличие кишечно-синовиальной оси при аутоиммунном воспалении в суставах [76]. С помощью иммуногистохимического анализа выявлена экспрессия интегрина типа αEβ7 в слизистой кишечника больных ревматоидным артритом (РА) с одновременной экспрессией Е-кадгерина синовиоцитами [77]. Клетки Th1, Th2, Th17 находятся в очагах воспаления, выполняя функцию клеток-супрессоров. Клетки iTreg тонкой кишки могут достигать тканей с хроническим воспалением [78]. При наличии генетического дефекта образования естественных Tregs в тимусе возможна активация периферического аналога Tregs в слизистой кишечника при пероральном введении антигена [79].

Регуляторные Т-клетки (CD4+LAP+Tregs) в слизистой кишечника синтезируют пептид, связанный с ТФР-β, снижающий активность иммунного воспаления при ОА [80–82]. Регуляторные клетки 1-го типа активируются ИЛ-27 и ТФР-β, секретируемыми ДК, и опосредуют подавляющую аутоиммунитет функцию секрецией ИЛ-10, хотя они также продуцируют TGF-β [83, 84]. ДК и макрофаги вызывают дифференцировку iTregs [85]. Т-клетки естественные киллеры также рассматриваются как элементы оральной толерантности, так как они экспрессируют лиганд Fas, синтезируют высокие уровни ИЛ-4, участвуют в апоптозе Т-клеток и способствуют переходу клеток Th1 в Th2 [86].

Показано, что пероральное введение антигена крайне эффективно до появления аутоиммуного заболевания [84]. Этот факт можно объяснить ранней активацией антиген-специфических Т-клеток в ответ на антигены пищи до появления эффекторных Т-клеток [87, 88]. Усилить эффекты пероральной толерантности к антигенам можно противовоспалительными цитокинами [89] и моноклональными антителами к CD3 [90].

Многие исследователи считают, что коллаген и его производные могут эффективно применяться при артрите [91]. При этом следует помнить, что оральная толерантность возникает только при идентификации в качестве непатогенной правильной трехмерной конформации антигена НК-II [73]. Данный факт может служить основанием для профилактического назначения НК-II. Эндогенные вещества в условиях дегенерации суставного хряща являются антигенным стимулом в процессе прогрессирования ОА [92]. Сегодня выясняется роль антител к коллагену II типа в суставном хряще при ОА и эффективность НК-II при артрите [93–95]. K. Katsumata et al. [96] показали, что коллаген связывается с антителом к ФНО-α пептидами декорина, что блокирует развитие воспаления при артрите. Эпитопы спиральной структуры коллагена — аминокислотные остатки (глицин, пролин, гидроксипролин и гидроксилизин) взаимодействуют с клетками иммунной системы и продуктами их активности и участвуют в формировании оральной толерантности. Ключевое значение имеет характер гликозилирования коллагена II типа [94, 97, 98] (см. рисунок).

Рисунок. Механизм действия коллагена и его пептидов при ОА (адаптировано из [91]).

По данным C. Paul et al. [99], прием нутрицевтиков с коллагеном предотвращает деструкцию суставного хряща, в том числе посредством защиты его от свободнорадикального окисления и воспаления.

Авторы различных исследований показали, что при РА обнаруживаются дефекты гликозилирования/галактозилирования, которые являются причиной ответа в виде гипераутореактивного иммунного саморазрушения коллагена суставов [100]. Пероральный прием малых доз НК-II при РА предотвращал атаки Т-лимфоцитов на коллаген II типа в суставах, индуцировал иммунологическую гипореактивность, способствовал уменьшению боли и воспаления в суставах [101]. Денатурированный коллаген может быть источником субстрата для синтеза суставного хряща, но он не вызывает иммунологической гипореактивности и не влияет на уменьшение боли и воспаления в связи с тем, что третичные и четвертичные структуры в денатурированной форме разрушены вместе с остатком галактозы и пейерова бляшка не распознает эпитоп [67, 73].

Таким образом, молекулярный механизм действия НК-II, реализующийся на уровне ключевых межклеточных и сигнальных взаимодействий в локальной иммунной системе тонкой кишки и регулирующий активность иммунной системы в рамках кишечно-синовиальной оси, лежит в основе предотвращения атаки Т-лимфоцитов на коллаген II типа и его разрушения в суставах при ОА.

Механизм действия компонентов новой фармаконутрицевтической композиции у пациентов с ОА

Рассмотрим механизм действия основных компонентов нового фармаконутрицевтика ХондрогардТРИО — ХС, ГС и НК-II при ОА. Существенным преимуществом является сбалансированный состав фармаконутрицевтика, который предусматривает оптимальное соотношение всех компонентов, что позволяет получить потенцирование их положительных фармакологических эффектов.

Композиция включает активные соединения, которые при растворении в воде образуют молекулярные кластеры. При пероральном приеме раствора комбинированного фармаконутрицевтика происходит абсорбция активных структур при запуске механизма оральной толерантности НК-II.

Основными фармакологическими эффектами ГС являются активация синтеза протеогликанов, гиалуроновой, хондроитинсерной кислот и 40 регуляторных белков — строительного материала для синовиальной ткани сустава, внутрисуставной жидкости и хрящевой ткани [102, 103]. ГС оказывает противовоспалительное действие за счет ингибирования транслокации внутрь клеточного ядра транскрипционного ядерного фактора kВ посредством связывания с рецептором CD44 со снижением активности провоспалительных цитокинов (ФНО-α, ИЛ-1β), а также за счет блокады активности гена циклооксигеназы 2. ГС увеличивает синтез SIgA в кишечнике, а также регулирует миграцию лейкоцитов, связывание рецепторов гематопоэтина/интерферонов. ГС повышает секрецию компонентов ЭЦМ соединительной ткани (коллагена, аннексина, тенасцина, аггрекана), факторов роста соединительной ткани, снижает содержание протеаз, разрушающих соединительную ткань [104]. ГС оказывает быстрый анальгетический и противовоспалительный эффект, замедляет прогрессирование дегенеративных процессов в суставах, позвоночнике и околопозвоночных мягких тканях, ограничивает активность нейродегенеративных процессов.

В состав фармаконутрицевтика ХондрогардТРИО входит ХС — высокомолекулярный мукополисахарид, который нормализует обмен веществ в хрящевой ткани, стимулирует синтез протеогликанов, гиалуроновой кислоты, коллагена II типа, ускоряет регенерацию в суставном хряще, синовиальной оболочке, поддерживает вязкость синовиальной жидкости. Фармакологические эффекты появляются вследствие связывания ХС с пятью мембранными рецепторами (TLR4, CD44, CD97, ICAM1, интегрины), что приводит к существенному снижению ядерной транслокации транскрипционного ядерного фактора kВ, уменьшению активности свободнорадикального окисления и активности провоспалительных цитокинов (ФНО-α, ИЛ-1β), увеличению синтеза коллагена. ХС характеризуется умеренным и пролонгированным противовоспалительным и болеутоляющим действием. При длительном применении замедляет прогрессирование ОА, уменьшает потребность в применении НПВП [30–33].

Компонент фармаконутрицевтика ХондрогардТРИО — гликозилированный НК-II, небольшие дозы которого влияют на здоровье суставов при ОА [34, 37]. T. Tong et al. [105] на модели коллаген-индуцированного артрита in vivo продемонстрировали, что прием микрограммов НК-II статистически значимо снижает уровни провоспалительных цитокинов в крови, способствует снижению частоты и тяжести ОА. После перорального введения активные эпитопы НК-II взаимодействуют с пейеровыми бляшками GALT в двенадцатиперстной кишке и снижают системную атаку Т-лимфоцитов на хрящ, формируя иммунную толерантность при ОА [34]; подавляют экспрессию цитокина семейства ФНО RANKL CD4+Т-клеток, регулируемую ИЛ-17 [106, 107].

После перорального приема НК-II подвергается воздействию соляной кислоты и пепсина. Мономеры в форме тройной спирали перемещаются к пейеровым бляшкам и связываются с ними. Пепсин не разрушает тройную спиральную конфигурацию мономеров из-за биохимических ограничений, поэтому активные центры всегда остаются нетронутыми. Пепсин не расщепляет связи, содержащие аминокислоты валин, аланин или глицин [108, 109]. В процессе пищеварения неповрежденные фибриллы коллагена (комбинация мономеров коллагена, сахаров и телопротеинов) распадаются на мономерные пептиды коллагена (более мелкие гликопептидные единицы), обнажая дополнительные эпитопы [110]. В то же время телопептиды чувствительны к пепсину и расщепляются в кишечнике [111], что ослабляет тройную спираль коллагена и представляет дополнительные активные эпитопы гликопротеина коллагена. В результате активные эпитопы НК-II в еще большей степени связываются и распознаются пейеровыми бляшками, взаимодействуют с ними, снижая иммунную атаку организма на собственный коллаген II типа в суставе [112].

У здоровых людей после интенсивных физических нагрузок прием НК-II улучшает функцию суставов вследствие активации Тregs в месте перенапряжения КС и высвобождения противовоспалительных цитокинов ИЛ-10 и ТФР-β, таким образом снижая интенсивность катаболических изменений при физической нагрузке [113, 114]. ИЛ-10 и ТФР-β сдвигают баланс T-лимфоцитов в КС в сторону клеток Th2 [115] с секрецией ИЛ-4, что обусловливает увеличение синтеза компонентов ЭЦМ хондроцитами. Также в эксперименте выявлено ограничение роста остеофитов после приема НК-II [116].

Таким образом, новый фармаконутрицевтик ХондрогардТРИО может применяться для замедления дегенеративно-дистрофических процессов в хрящевой ткани, стимуляции образования новых коллагеновых волокон и коррекции локального иммунного статуса в суставах и позвоночнике у пациентов с ОА и у здоровых лиц после травм и физических нагрузок.

Ведение пациентов с ОА: от клинических исследований к персонализированной фармаконутрицевтической поддержке

Современный научно обоснованный подход к лечению ОА базируется на применении немедикаментозных и фармакологических методов, различных методов хирургического вмешательства. Рабочая группа ESCEO рекомендует применение ХС на первом этапе как средство длительной базисной терапии ОА КС с оценкой по системе градации качества, разработки и оценки рекомендаций 81% [117].

При применении ХС 4 и 6 показана переменная эффективность в отношении боли при ОА [21, 118]. Метаанализ данных эффективности ХС продемонстрировал умеренное влияние ХС на боль и более выраженное — на функциональную активность при ОА КС [119]. ХС фармацевтической категории не отличается от целекоксиба по эффективности влияния на боль и функцию сустава при терапии симптоматического ОА КС [120]. ХС, назначаемый пациентам с ОА, характеризуется благоприятным структурно-модифицирующим действием на структуру сустава, подтвержденным результатами магнитно-резонансной томографии [121]; морфологическими эффектами на уровне суставного хряща [122, 123]. В сетевом метаанализе долгосрочных (12 мес. и более) клинических исследований эффективности разных режимов терапии ОА ХС продемонстрировал положительное влияние на структурные изменения КС [124]. При этом ХС характеризуется хорошими показателями безопасности при приеме в дозах до 1200 мг/сут [118, 125, 126].

В ходе метаанализа восьми клинических исследований в России (n=771, возраст 53,6±6,2 года) применения препарата Хондрогард® (100 мг в/м первые 3 инъекции, с 4-й инъекции — по 200 мг в/м через день, курс 20–30 инъекций) в комплексной терапии ОА показано, что препарат высокоочищенного ХС является эффективным средством лечения ОА по параметрам снижения боли по ВАШ, индекса Лекена и индекса WOMAС, имеет высокий уровень безопасности [29].

Совет экспертов мультидисциплинарного консенсуса в 2021 г. констатировал, что рутинная клиническая практика в большинстве случаев ограничивается выбором НПВП и пероральных форм симптоматических лекарственных средств замедленного действия (СЛСЗД) [27]. Защита суставного хряща осуществляется посредством применения СЛСЗД и DMOADs, среди которых наибольшей доказательной базой эффективности обладают ХС и ГС, включенные в состав нового фармаконутрицевтика ХондрогардТРИО. Симптоматический эффект от применения указанных препаратов развивается через 8–12 нед. после начала приема, структурно-модифицирующий эффект — при продолжительности лечения не менее 2 лет. Для ХС и ГС характерен эффект последействия, продолжающийся в течение 2–4 мес. после прекращения лечения. Преимуществом ХС является возможность снижения дозы или полной отмены НПВП на фоне его приема, что значимо снижает частоту НЯ НПВП [118, 119, 127]. На старте терапии для обеспечения высокой биодоступности и достижения более быстрого обезболивающего эффекта препараты на основе ХС целесообразно назначать парентерально, в виде внутримышечных инъекций, с последующей поддержкой достигнутого эффекта с помощью фармаконутрицевтика ХондрогардТРИО.

Действие ГС изучалось в клинических исследованиях, которые показали наличие у него симптом- и структурно-модифицирующего действия с оценкой по системе GRADE (Grading of Recommendations Assessment, Development and Evaluation): степень рекомендаций сильная, качество доказательств умеренное [128].

Метаанализ [129] шести двойных слепых плацебо-контролируемых исследований выявил эффективность ГС со стандартизированным средним различием 0,44 (95% ДИ 0,24–0,64).

Авторы систематического обзора 16 сравнительных рандомизированных контролируемых исследований ГС и плацебо (13 исследований), ГС и НПВП (3 исследования) выявили, что лечение ГС (15 исследований) сопровождается уменьшением боли и улучшением функции суставов в такой же степени, как и при использовании анальгетиков и НПВП, при высоком уровне безопасности [130]. Среди ответивших на 6-месячную терапию пациентов с ОА КС II–III рентгенологической стадии (n=318) по критерию OMERACT-OARSI доля принимавших ГС оказалась выше, чем среди получавших ацетаминофен (р=0,004 и р=0,047 по сравнению с плацебо) [131].

В двух двойных слепых рандомизированных плацебо-контролируемых 3-летних исследованиях с участием 212 и 202 больных с ОА КС доказано наличие структурно-модифицирующего действия ГС в суточной дозе 1500 мг [132]. Также в долгосрочных исследованиях установлено, что относительный риск эндопротезирования оказался существенно ниже у пациентов, принимавших ГС, по сравнению с пациентами, получавшими плацебо, при отсутствии серьезных НЯ [133].

Влияние НК-II в дозе 40 мг оценивалось у здоровых добровольцев с болью в КС после физической активности по окончании 3-месячного курса терапии: выявлено статистически значимое изменение среднего показателя разгибания колена у здоровых добровольцев, принимавших НК-II (p=0,045), по сравнению с исходным уровнем; при этом время до появления начального дискомфорта в суставах значительно увеличилось (p=0,019) по сравнению с исходным значением [36].

D. Crowley et al. [37] сравнили эффективность и безопасность НК-II (n=26) с комбинацией глюкозамина и хондроитина (n=26) при лечении ОА КС. Прием НК-II обеспечил нарастающее статистически значимое (p<0,005) снижение индекса WOMAC по сравнению с исходным значением в каждой контрольной точке (1, 2 и 3 мес.), тогда как комбинация глюкозамина и хондроитина, снизив индекс WOMAC в первые 2 мес. (p<0,005 и р<0,05), в дальнейшем не обеспечила сохранение достигнутого эффекта. В целом оценка по ВАШ снизилась на 40% в группе НК-II по сравнению с 15,4% в группе сравнения, функциональный индекс — на 20,1 и 5,9% соответственно. Группы не различались по частоте зарегистрированных НЯ [37].

Многоцентровое рандомизированное двойное слепое исследование [134] было посвящено сравнению эффективности и переносимости НК-II (40 мг в день) с плацебо и глюкозамина гидрохлоридом (1500 мг) в сочетании с ХС (1200 мг) в течение 6 мес. у пациентов с ОА КС (n=191). Изменение общего балла WOMAC оказалось статистически значимым для НК-II по сравнению с обеими группами сравнения. Кроме того, отмечено статистически значимое снижение по всем трем (боль, скованность и физическая функция) подшкалам WOMAC при приеме НК-II по сравнению с плацебо и по подшкалам боли и скованности WOMAC по сравнению с комбинацией глюкозамина с ХС. Прием НК-II обусловил статистически значимое снижение среднего балла по ВАШ по сравнению с обеими группами (p=0,002 и p=0,025 для группы плацебо и глюкозамина с ХС соответственно) при высоком уровне безопасности. Установлено, что при уровне белка олигомерного матрикса хряща (COMP), превышающем 285 нг/мл, более выраженное снижение общего балла WOMAC при сравнении трех групп исследования имело место среди пациентов, получавших НК-II.

Безопасность и эффективность применения НК-II при ОА КС оценивали в интервенционном исследовании в реальной клинической практике в Индии (53,3% женщин, средний возраст 56,2±8,7 года). В анализе безопасности (n=291) хотя бы одно НЯ, не расценененное как серьезное, отметили 4,47% пациентов. Среди частых НЯ были тошнота (1,37%) и головная боль (1,03%). В целом результатом лечения НК-II в течение 3 мес. стало статистически значимое снижение баллов по шкале WOMAC (p<0,0001) и по ВАШ (p<0,0001) по сравнению с исходным уровнем [135].

Оценка эффективности перорального применения НК-II в дозе 10 мг/сут в отношении симптомов и биологических маркеров деградации хряща при одновременном применении с ацетаминофеном у пациентов с ОА КС (n=39) была проведена в 3-месячном рандомизированном контролируемом исследовании. К окончанию срока наблюдения отмечено значительное улучшение по сравнению с исходным уровнем по показателям боли в суставах (ходьба по ВАШ), функции (WOMAC) и качества жизни (SF-36) в группе пациентов, получавших комбинированную терапию ацетаминофеном и НК-II. Авторы предположили, что лечение НК-II в сочетании с ацетаминофеном превосходит ацетаминофен в монорежиме для симптоматического лечения пациентов с ОА КС [136].

Систематический обзор эффективности и безопасности биологически активных добавок, используемых при ОА суставов кисти, бедренного или коленного суставов, включавший 69 рандомизированных клинических исследований (11 586 участников) и 20 дополнительных исследований, показал, что НК-II значимо снижает боль в суставе в среднесрочной перспективе. Установлено, что терапия ХС приводит к небольшим, но статистически значимым долгосрочным эффектам в отношении структурных изменений в суставе при сравнении с плацебо (размер эффекта (SMD) -0,30, 95% ДИ от -0,42 до -0,17, I2=5). Во всех проанализированных исследованиях НК-II, ХС и ГС показали свою безопасность [137].

Заключение

Таким образом, разработка новых фармаконутрицевтиков для профилактики и вспомогательной терапии костно-мышечных заболеваний является актуальной задачей современной медицины в силу большой распространенности дегенеративно-дистрофических заболеваний опорно-двигательного аппарата и недостаточной эффективности известных хондропротекторов. Заболевания костно-мышечной системы выявляются на уровне ошибок на этапах биоидентификации, распознавания и передачи ответных сигналов в организме пациента. Поэтому быстро развивающаяся фармаконутрициология открывает новые перспективы в профилактике и вспомогательной терапии с помощью новых фармаконутрицевтиков. 


1«ТРИО товарного знака (т .з .) Хондрогард® Food supplement TRIO of trademark Chondroguard®», далее по тексту ХондрогардТРИО . БАД . Не является лекарством . Владе- лец товарного знака «ХондрогардТРИО» ЗАО «ФармФирма «Сотекс» . Свидетельство No811357 от 20 .02 .2021 .




1. Leifer V., Katz J., Losina E. The burden of OA-health services and economics. Osteoarthritis Cartilage. 2022;30:10–16. DOI: 10.1016/j.joca.2021.05.007.
2. Murray C., Vos T., Lozano R. et al. Disability-adjusted life years (DALYs) for 291 diseases and injuries in 21 regions, 1990–2010: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2010. Lancet. 2012;380(9859):2197–2223. DOI: 10.1016/s0140-6736(12)61689-4.
3. Cross M., Smith E., Hoy D. et al. The global burden of hip and knee osteoarthritis:estimates from the Global Burden of Disease 2010 study. Ann Rheum Dis. 2014;73:1323–1330. DOI: 10.1136/annrheumdis-2013-204763.
4. Российские клинические рекомендации. Ревматология. Под ред. Насонова Е.Л. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2017. [Russian clinical guidelines. Rheumatology. Nasonov E.L.,ed. M.: GEOTAR-Media; 2017 (in Russ.)].
5. Trentham D.E., Halpner A.E., Trentham R.A. et al. Use of undenatured type II collagen in the treatment of rheumatoid arthritis. Clin Prac Alter Med. 2001;2:254–259.
6. Felson D., Lawrence R., Dieppe P., Hirsch R. Osteoarthritis: new insights. Part 1: the disease and its risk factors. Ann Intern Med. 2000;133(8):635–646. DOI: 10.7326/0003-4819-133-8-200010170-00016.
7. Pal C., Singh P., Chaturvedi S. et al. Epidemiology of knee osteoarthritis in India and related factors. Indian J Orthop. 2016;50:518–522. DOI: 10.4103/0019-5413.189608.
8. Shek P., Shephard R. Physical exercise as a human model of limited inflammatory response. Can J Physiol Pharmacol. 1998;76:589–597. DOI: 10.1139/cjpp-76-5-589.
9. Guilak F. Biomechanical factors in osteoarthritis. Best Pract Res Clin Rheumatol. 2011;25:815–823. DOI: 10.1016/j.berh.2011.11.013.
10. Kawamura S., Lotito K., Rodeo S. Biomechanics and healing response of the meniscus. Oper Tech Sports Med. 2003;11:68–76. DOI: 10.3390/cells9010092.
11. Ramage L., Nuki G., Salter D. Signalling cascades in mechanotransduction: cell-matrix interactions and mechanical loading. Scand J Med Sci Sports. 2009;19:457–469. DOI: 10.1111/j.1600-0838.2009.00912.x.
12. Kawano M., Araujo I., Castro M., Matos M. Assessment of quality of life in patients with knee osteoarthritis. Acta Ortop Bras. 2015;23:307–310. DOI: 10.1590/1413-785220152306150596.
13. Van Vijven J., Luijsterburg P., Verhagen A. et al. Symptomatic and chondroprotective treatment with collagen derivatives in osteoarthritis: a systematic review. Osteoarthritis Cartilage. 2012;20:809–821. DOI: 10.1016/j.joca.2012.04.008.
14. Buckwalter J. Articular cartilage injuries. Clin Orthop Relat Res. 2002;402:21–37. DOI: 10.1097/00003086-200209000-00004.
15. Iagnocco A. Osteoarthritis. In: Essential Applications of Musculoskeletal Ultrasound in Rheumatology. Wakefield R.J., D’Agostino M.A., eds. W.B. Saunders: Philadelphia, USA; 2010:165–180.
16. Bagi C., Berryman E., Teo S., Lane N. Oral administration of undenatured native chicken type II collagen (UC-II) diminished deterioration of articular cartilage in a rat model of osteoarthritis (OA). Osteoarthritis Cartilage. 2017;25:2080–2090. DOI: 10.1016/j.joca.2017.08.013.
17. Loeser R., Goldring S., Scanzello C., Goldring M. Osteoarthritis: a disease of the joint as an organ. Arthritis Rheum. 2012;64(6):1697–1707. DOI: 10.1002/art.34453.
18. Camarero-Espinosa S., Rothen-Rutishauser B., Johan Fostera E., Weder Ch. Articular cartilage: from formation to tissue engineering. Biomater Sci. 2016;4(5):734–767. DOI: 10.1039/c6bm00068a.
19. Hochberg M., Altman R., April K. et al. American College of Rheumatology 2012 recommendations for the use of nonpharmacologic and pharmacologic therapies in osteoarthritis of the hand, hip, and knee. Arthritis Care Res (Hoboken). 2012;64(4):465–674. DOI: 10.1002/acr.21596.
20. Hunter D. Pharmacologic therapy for osteoarthritis — the era of disease modification. Nat Rev Rheumatol. 2011;7(1):13–22. DOI: 10.1038/nrrheum. 2010.178.
21. McAlindon T., Bannuru R., Sullivan M. et al. OARSI guidelines for the non-surgical management of knee osteoarthritis. Osteoarthritis Cartilage. 2014;22:363–388. DOI: 10.1016/j.joca.2014.01.003.
22. Da Costa B., Reichenbach S., Keller N. et al. Effectiveness of non-steroidal anti-inflammatory drugs for the treatment of pain in knee and hip osteoarthritis: a network meta-analysis. Lancet. 2016;387(10033):2093–2105. DOI: 10.1016/S0140-6736(16)30002-2.
23. Basedow M., Runciman W., March L. Australians with osteoarthritis: the use of and beliefs about complementary and alternative medicines. Complement Ther Clin Pract. 2014;20:237–242. DOI: 10.1016/j.ctcp.2014.08.002.
24. Van Sasse J., van Romunde L., Cats A., Vanderbroucke J. Epidemiology of osteoarthritis: Zoetermeer survey. Comparison of radiological osteoarthritis in a Dutch population with that in 10 other populations. Ann Rheum Dis. 1989;48(4):271–280. DOI: 10.1136/ard.48.4.271.
25. Brown L. Pet Nutraceuticals; Inter-Cal Nutraceuticals. US: Arthritis Foundation; 2005.
26. Rovati L., Girolami F., Persiani S. Crystalline glucosamine sulfate in the management of knee osteoarthritis: efficacy, safety, and pharmacokinetic properties. Ther Adv Musculoskel Dis. 2012;4(3):167–180. DOI: 10.1177/1759720X12437753.
27. Лила А.М., Ткачева О.Н., Наумов А.В. и др. Место и роль парентеральной формы хондроитина сульфата в терапии остеоартрита: мультидисциплинарный консенсус. РМЖ. 2021;6:68–74. [Lila A.M., Tkacheva O.N., Naumov A.V. et al. Place and role of the parenteral form of chondroitin sulfate in the treatment of osteoarthritis: multidisciplinary consensus. RMJ. 2021;6:68–74 (in Russ.)].
28. Reginster J.-Y., Veronese N. Highly purified chondroitin sulfate: a literature review on clinical efficacy and pharmacoeconomic aspects in osteoarthritis treatment. Aging Clin Exp Res. 2021;33(1):37–47. DOI: 10.1007/s40520-020-01643-8.
29. Торшин И.Ю., Лила А.М., Наумов А.В. и др. Метаанализ клинических исследований эффективности лечения остеоартита препаратом Хондрогард. Фармакоэкономика. Современная фармакоэкономика и фармакоэпидемиология. 2020;13(4):388–399. [Torshin I.Yu., Lila A.M., Naumov A.V. et al. Meta-analysis of clinical trials of osteoarthritis treatment effectiveness with Chondroguard. Farmakoekonomika. Modern Pharmacoeconomics and Pharmacoepidemiology. 2020;13(4):388–399 (in Russ.)]. DOI: 10.17749/2070-4909/farmakoekonomika.2020.066.30.
30. Chan P., Caron J., Orth M. Effect of glucosamine and chondroitin sulfate on regulation of gene expression of proteolytic enzymes and their inhibitors in interleukin-1-challenged bovine articular cartilage explants. Am J Vet Res. 2005; 66(11):1870–1876. DOI: 10.2460/ajvr.2005.66.1870.
31. Tat S., Pelletier J., Vergés J. et al. Chondroitin and glucosamine sulfate in combination decrease the pro-resorptive properties of human osteoarthritis subchondral bone osteoblasts. Arthritis Res Ther. 2007;9:R117. DOI: 10.2460/ajvr.2005.66.1870.
32. Monfort J., Pelletier J.-P., Garcia-Giralt N., Martel-Pelletier J. Biochemical basis of the effect of chondroitin sulfate on osteoarthritis articular tissues. Ann Rheum Dis. 2008;67:735–740. DOI: 10.1136/ard.2006.068882.
33. Martel-Pelletier J., Kwan Tat S., Pelletier J. Effects of chondroitin sulfate in the pathophysiology of the osteoarthritic joint: a narrative review. Osteoarthritis Cartilage. 2010;18 Suppl 1:S7–11. DOI: 10.1016/j.joca.2010.01.015.
34. Bagchi D., Misner B., Bagchi M. et al. Effects of orally administered undenatured type II collagen against arthritic inflammatory diseases: a mechanistic exploration. Int J Clin Pharmacol Res. 2002;22(3–4):101–110. PMID: 12837047.
35. Prabhoo R., Billa G. Undenatured collagen type II for the treatment of osteoarthritis: A review. Int J Res Orthop. 2018;4:684–649. DOI: 10.18203/issn.2455-4510.
36. Lugo J., Saiyed Z., Lau F. et al. Undenatured type II collagen (UC-II®) for joint support: A randomized, double-blind, placebo-controlled study in healthy volunteers. J Int Soc Sports Nutr. 2013;10:48. DOI: 10.1186/1550-2783-10-48.
37. Crowley D., Lau F., Sharma P. et al. Safety and efficacy of undenatured type II collagen in the treatment of osteoarthritis of the knee: A clinical trial. Int J Med Sci. 2009;6:312–321. DOI: 10.7150/ijms.6.312.
38. Shiojima Y., Takahashi M., Takahashi R. et al. Efficacy and safety of dietary undenatured type II collagen on joint and motor function in healthy volunteers:a randomized, double-blind, placebo-controlled, parallel-group study. J Am Nutr Assoc. 2022;12(7):1–18. DOI: 10.1080/07315724.2021.2024466. 39. Firestein G., Kelley W. Kelley’s Textbook of Rheumatology. 8th ed. Saunders Elsevier; 2009.
40. Athanasiou K., Darling E., DuRaine G. et al. Articular cartilage. CRC Press; 2013.
41. Eyre D., The collagens of articular cartilage. Semin Arthritis Rheum. 1991;21(3 Suppl 2):2–11. DOI: 10.1016/0049-0172(91)90035-x.
42. Whitesides T. Orthopaedic Basic Science. Biology and Biomechanics of the Musculoskeletal System. 2nd ed. 2001.
43. Johnstone B., Alini M., Cucchiarini M. et al. Tissue engineering for articular cartilage repair — the state of the art. Eur Cell Mater. 2013;25:248–267. DOI: 10.22203/ecm.v025a18. Полный список литературы Вы можете найти на сайте http://www.rmj.ru
44. Mow V., Guo X. Mechano-electrochemical properties of articular cartilage: their inhomogeneities and anisotropies. Annu Rev Biomed Eng. 2002;4:175–209. DOI: 10.1146/annurev.bioeng.4.110701.120309.
45. Zelenski N., Leddy H., Sanchez-Adams J. et al. Type VI collagen regulates pericellular matrix properties, chondrocyte swelling, and mechanotransduction in mouse articular cartilage. Arthritis Rheumatol. 2015;67(5):1286–1294. DOI: 10.1002/art.39034.
46. Graham H., Holmes D., Watson R., Kadler K. Identification of collagen fibril fusion during vertebrate tendon morphogenesis. The process relies on unipolar fibrils and is regulated by collagen-proteoglycan interaction1. J Mol Biol. 2000;295(4):891–902. DOI: 10.1006/jmbi.1999.3384.
47. Kadler K. Matrix loading: assembly of extracellular matrix collagen fibrils during embryogenesis Birth Defects Res C Embryo Today. 2004;72(1):1–11. DOI: 10.1002/bdrc.20002.
48. Brody L. Knee osteoarthritis: clinical connections to articular cartilage structure and function. Phys Ther. Sport. 2015;16(4):301–316. DOI: 10.1016/j.ptsp.2014.12.001.
49. Roughley P. Articular cartilage and changes in arthritis: noncollagenous proteins and proteoglycans in the extracellular matrix of cartilage. Arthritis Res. 2001;3(6):342–347. DOI: 10.1186/ar326.
50. Kiani C., Chen L., Wu Y. et al. Structure and function of aggrecan. Cell Res. 2002;12:19–32. DOI: 10.1038/sj.cr.7290106.
51. Melrose J., Fuller E., Roughley P. et al. Fragmentation of decorin, biglycan, lumican and keratocan is elevated in degenerate human meniscus, knee and hip articular cartilages compared with age-matched macroscopically normal and control tissues. Arthritis Res Ther. 2008;10(4):R79. DOI: 10.1186/ar2453.
52. Sadatsuki R., Kaneko H., Kinoshita M. et al. Perlecan is required for the chondrogenic differentiation of synovial mesenchymal cells through regulation of Sox9 gene expression. J Orthop Res. 2016;35(4):837–846. DOI: 10.1002/jor.23318.
53. Nakagawa Y., Muneta T., Otabe K. et al. Cartilage derived from bone marrow mesenchymal stem cells expresses lubricin in vitro and in vivo. PLoS One 2016;11(2):e0148777. DOI: 10.1371/journal.pone.0148777.
54. Ulrich-Vinther M., Maloney M., Schwarz E. et al. Articular cartilage biology. J Am Acad Orthop Surg. 2003;11(6):421–430. DOI: 10.5435/00124635-200311000-00006.
55. Kozhemyakina E., Lassar A., Zelzer E. A pathway to bone: signaling molecules and transcription factors involved in chondrocyte development and maturation. Development. 2015;142(5):817–831. DOI: 10.1242/dev.105536.
56. Goldring M., Otero M. Inflammation in osteoarthritis. Curr Opin Rheumatol. 2011;23(5):471–478. DOI: 10.1097/BOR.0b013e328349c2b1.
57. Tsuchida A., Beekhuizen M., C’t Hart M. et al. Cytokine profiles in the joint depend on pathology, but are different between synovial fluid, cartilage tissue and cultured chondrocytes. Arthritis Res Ther. 2014;16(5):441. DOI: 10.1186/s13075-014-0441-0.
58. Klatt A., Paul-Klausch B., Klinger G. et al. A critical role for collagen II in cartilage matrix degradation: collagen II induces pro-inflammatory cytokines and MMPs in primary human chondrocytes. J Orthop Res., 2009;27(1):65–70. DOI: 10.1002/jor.20716.
59. Goldring M., Tsuchimochi K. Ijiri K. The control of chondrogenesis. J Cell Biochem. 2006;97(1):33–44. DOI: 10.1002/jcb.20652.
60. Joosten L., Smeets R., Koenders M. et al. Interleukin-18 promotes joint inflammation and induces interleukin-1-driven cartilage destruction. Am J Pathol. 2004;165(3):959–967. DOI: 10.1016/S0002-9440(10)63357-3.
61. Zhen G., Wen C., Jia X. et al. Inhibition of TGF-b signaling in mesenchymal stem cells of subchondral bone attenuates osteoarthritis. Nat Med. 2013;19(6):704–712. DOI: 10.1038/nm.3143.
62. Rengel Y., Ospelt C., Gay S. Proteinases in the joint: clinical relevance of proteinases in joint destruction. Arthritis Res Ther. 2007;9(5):221. DOI: 10.1186/ar2304.
63. Szafranski J., Grodzinsky A., Burger E. et al. Chondrocyte mechanotransduction: effects of compression on deformation of intracellular organelles and relevance to cellular biosynthesis. Osteoarthritis Cartilage. 2004;12:937–946. DOI: 10.1016/j.joca.2004.08.004.
64. Millward-Sadler S., Wright M., Davies L., Nuki G., Salter D. Mechanotransduction via integrins and interleukin-4 results in altered aggrecan and matrix metalloproteinase 3 gene expression in normal, but not osteoarthritic, human articular chondrocytes. Arthritis Rheum. 2000;43:2091–2099. DOI: 10.1002/1529-0131(200009)43:9<2091::AID-ANR21>3.0.CO;2-C.
65. Chengjie L., Wang X., Qiu X. et al. Collagen type II suppresses articular chondrocyte hypertrophy and osteoarthritis progression by promoting integrin β1-SMAD1 interaction. Bone Res. 2019;7:8. DOI: 10.1038/s41413-019-0046-y.
66. Faria A., Weiner H. Oral tolerance. Immunol Rev. 2005;206:232–259. DOI: 10.1111/j.0105-2896.2005.00280.x.
67. Nagler-Anderson C., Bober L., Robinson M. et al. Suppression of type II collagen-induced arthritis by intragastric administration of soluble type II collagen. Proc Natl Acad Sci USA. 1986;83:7443–7446. DOI: 10.1073/pnas.83.19.7443.
68. Pinheiro-Rosa N., Torres L., de Almeida Oliveira M. et al. Oral tolerance as antigen-specific immunotherapy. Immunotherapy Adv. 2021;1(1):ltab017. DOI: 10.1093/immadv/ltab017.
69. Bertolini T., Biswas M., Terhorst C. et al. Role of orally induced regulatory T cells in immunotherapy and tolerance. Cell Immunol. 2021;359:104251. DOI: 10.1016/j. cellimm.2020.104251.
70. Rezende R., Weiner H. Cellular components and mechanisms of oral tolerance induction. Crit Rev Immunol. 2018;38:207–231. DOI: 10.1615/ CritRevImmunol.2018026181.
71. Faria A., Gomes-Santos A., Gonçalves J. et al. Food components and the immune system: from tonic agents to allergens. Front Immunol. 2013;4:102. DOI: 10.3389/fimmu.2013.00102.
72. Hooper L., Littman D., Macpherson A. Interactions between the microbiota and the immune system. Science. 2012;336(6086):1268–1273. DOI: 10.1126/science.1223490.
73. Weiner H. Oral tolerance: immune mechanisms and treatment of autoimmune diseases. Immunol Today. 1997;18:335. DOI: 10.1016/s0167-5699(97)01053-0.
74. Pabst O., Mowat A. Oral tolerance to food protein. Mucosal Immunol. 2012;5(3):232–239. DOI: 10.1038/mi.2012.4.
75. Esterházy D., Canesso M., Mesin L. et al. Compartmentalized gut lymph node drainage dictates adaptive immune responses. Nature. 2019;569:126–130. DOI: 10.1038/s41586-019-1125-3.
76. Trollmo C., Sollerman C., Carlsten H. et al. The gut as an inductive site for synovial and extra-articular immune responses in rheumatoid arthritis. Ann Rheum Dis. 1994;53:377–382. DOI: 10.1136/ard.53.6.377.
77. Trollmo C., Nilsson I., Sollerman C. et al. Expression of the mucosal lymphocyte integrin α(E)β7 and its ligand E-cadherin in the synovium of patients with rheumatoid arthritis. Scand J Immunol. 1996;44(3):293–298. PMID 8795724.
78. Cao D., Borjesson O., Larsson P. et al. FOXP3 identifies regulatory CD25brightCD4+ T cells in rheumatic joints. Scand J Immunol. 2006;63(6):444–452. DOI: 10.1111/j.1365-3083.2006.001755.x.
79. Pabst O., Bernhardt G. On the road to tolerance — Generation and migration of gut regulatory T cells. Eur J Immunol. 2013;43(6):1422–1425. DOI: 10.1002/eji.201243154.
80. Oida T., Weiner H. TGF-β induces surface LAP expression on murine CD4 T cells independent of Foxp3 induction. PLoS One., 2010;5:e15523. DOI: 10.1371/journal. pone.0015523.
81. Da Cunha A., Wu H., Rezende R. et al. In vivo anti-LAP mAb enhances IL-17/IFN-γ responses and abrogates anti-CD3-induced oral tolerance. Int Immunol. 2015;27:73–82. DOI: 10.1093/intimm/dxu083.
82. Edwards J., Hand T., Morais da Fonseca D. et al. The GARP/Latent TGF-β1 complex on Treg cells modulates the induction of peripherally derived Treg cells during oral tolerance. Eur J Immunol. 2016;46:1480–1489. DOI: 10.1002/eji.201546204.
83. Gagliani N., Magnani C., Huber S. et al. Coexpression of CD49b and LAG-3 identifies human and mouse T regulatory type 1 cells. Nat Med. 2013;19:739–746. DOI: 10.1038/nm.3179.
84. Faria A., Weiner H. Oral tolerance: therapeutic implications for autoimmune diseases. Clin Dev Immunol. 2006;13:143–157. DOI: 10.1080/17402520600876804.
85. Coombes J., Siddiqui K., Arancibia-Cárcamo C. et al. A functionally specialized population of mucosal CD103+ DCs induces Foxp3+ regulatory T cells via a TGF-beta and retinoic acid-dependent mechanism. J Exp Med. 2007;204(8):1757–1764. DOI: 10.1084/jem.20070590.
86. Margenthaler J., Landeros K., Kataoka M. et al. CD1-dependent natural killer (NK1.1+) T cells are required for oral and portal venous tolerance induction. J Surg Res. 2002;104(1):29–35. DOI: 10.1006/jsre.2002.6400.
87. Mucida D., Kutchukhidze N., Erazo A. et al. Oral tolerance in the absence of naturally occurring Tregs. J Clin Invest. 2005;115(7):1923–1933. DOI: 10.1172/JCI24487.
88. Thorbecke G., Schwarcz R., Leu J. et al. Modulation by cytokines of induction of oral tolerance to type II collagen. Arthritis Rheum. 1999;42:110–118. DOI: 10.1002/1529-0131(199901)42:1<110::AIDANR14>3.0.CO;2-M.
89. Slavin A., Maron R., Weiner H. Mucosal administration of IL-10 enhances oral tolerance in autoimmune encephalomyelitis and diabetes. Int Immunol. 2001;13(6):825–833. DOI: 10.1093/intimm/13.6.825.
90. Kuhn C., Weiner H. Therapeutic anti-CD3 monoclonal antibodies: from bench to bedside. Immunotherapy. 2016;8(8):889–906. DOI: 10.2217/imt-2016-0049.
91. Elango J., Zamora-Ledezma C., Ge B. et al. Paradoxical Duel Role of Collagen in Rheumatoid Arthritis: Cause of Inflammation and Treatment. Bioengineering. 2022;9:321. DOI: 10.3390/ bioengineering9070321.
92. Yuan Q-H., Masuko-Hongo K., Kato T., Nishioka K. Immunologic intervention in the pathogenesis of osteoarthritis. Arthritis Rheum. 2003;48:602–611. DOI: 10.1002/art.10768.
93. Jasin H. Autoantibody specificities of immune complexes sequestered in articular cartilage of patients with rheumatoid arthritis and osteoarthritis. Arthritis Rheum. 1985;28:241–248. DOI: 10.1002/art.1780280302.
94. Burkhardt H., Koller T., Engström Å. et al. Epitope-specific recognition of type II collagen by rheumatoid arthritis antibodies is shared with recognition by antibodies that are arthritogenic in collagen-induced arthritis in the mouse. Arthritis Rheum. 2002;46:2339–2348. DOI: 10.1002/art.10472.
95. Myers L., Tang B., Stuart J., Kang A. The role of IL-4 in regulation of murine collagen-induced arthritis. Clin Immunol. 2002;102:185–191. DOI: 10.1006/clim.2001.5162.
96. Katsumata K., Ishihara J., Mansurov A. et al. Targeting inflammatory sites through collagen affinity enhances the therapeutic efficacy of anti-inflammatory antibodies. Sci Adv. 2019;5,eaay1971. DOI: 10.1126/sciadv.aay1971.
97. Kappler J., Staerz U., White J., Marrack P. Self-tolerance eliminates T cells specific for Mls-modified products of the major histocompatibility complex. Nature. 1988;332:35–40. DOI: 10.1038/332035a0.
98. Wernhoff P., Unger C., Bajtner E. et al. Identification of conformation-dependent epitopes and v gene selection in the B cell response to type II collagen in the DA rat. Int Immunol. 2001;13:909–919. DOI: 10.1093/intimm/13.7.909.
99. Paul C., Leser S., Oesser S. Significant amounts of functional collagen peptides can be incorporated in the diet while maintaining indispensable amino acid balance. Nutrients. 2019;11(5):1079. DOI: 10.3390/nu11051079.
100. Watson M., Rudd P., Bland M. et al. Sugar printing rheumatic diseases: a potential method for disease differentiation using immunoglobin G oligosaccharides. Arthritis Rheum. 1999;42(8):1682–1690. DOI: 10.1002/1529-0131(199908)42:8<1682:AID-ANR17>3.0.CO;2-X.
101. Barnett M., Kremer J., St Clair E. et al. Treatment of rheumatoid arthritis with oral type II collagen. Results of a multicenter, double-blind, placebo- controlled trial. Arthritis Rheum. 1998;41(2):290–297. DOI: 10.1002/1529-0131(199802)41:2<290::AID-ART13>3.0.CO;2-R.
102. Аннефельд М. Новые данные о глюкозамине сульфате. Научно-практическая ревматология. 2005;4:76–80. [Annefeld M. New data on glucosamine sulfate. Nauchno-prakticheskaya revmatologiya. 2005;4:76–80 (in Russ.)].
103. Register J., Rovati L., Deroisy R. et al. Glucosamine sulfate slows-down osteoarthritis progress in in postmenopausal women: pooled analysis of two large, independent, randomized double-blind placebo-controlled, prospective 3-year trials. Ann Rheum Dis. 2002;61(Suppl. 1).
104. Громова О., Торшин И., Лила А., Громов А. Молекулярные механизмы глюкозамина сульфата при лечении дегенеративно-дистрофических заболеваний суставов и позвоночника: результаты протеомного анализа. Неврология, нейропсихиатрия, психосоматика. 2018;10(2):38–44. [Gromova O.A., Torshin I.Yu., Lila A.M., Gromov A.N. Molecular mechanisms of action of glucosamine sulfate in the treatment of degenerative-dystrophic diseases of the joints and spine: results of proteomic analysis. Neurology, Neuropsychiatry, Psychosomatics. 2018;10(2):38–44. (in Russ.)]. DOI: 10.14412/2074-2711-2018-2-38-44.
105. Tong T., Zhao W., Wu Y. et al. Chicken type II collagen induced immune balance of main subtype of helper T cells in mesenteric lymph node lymphocytes in rats with collagen-induced arthritis. Inflamm Res. 2010;59:369–377. DOI: 10.1007/s00011-009-0109-4.
106. Ju J., Cho M., Jhun J. et al. Oral administration of type-II collagen suppresses IL-17-associated RANKL expression of CD4+ T cells in collagen-induced arthritis. Immunol Lett. 2008;117:16–25. DOI: 10.14412/2074-2711-2018-2-38-44.
107. Terato K., Hasty K., Reife R. Induction of arthritis with monoclonal antibodies to collagen. J Immunol. 1992;148:2103. PMID: 1545120.
108. Ryle A. The porcine pepsin and pepsinogens. In: Methods in Enzymology. XIX. Perlmann G.E., Lerand L., eds. New York: Academic Press. 1970:316–336.
109. Trelstad R., Kang A., Igarashi S. Isolation of two distinct collagens from chick cartilage. Biochem. 1970;9:4993.
110. Herbage D., Bouillet J., Bernengo J.C. Biochemical and physiochemical characterization of pepsin-solubilized type-II collagen from bovine articular cartilage. Biochem J. 1977;161(2):303–312. DOI: 10.1042/bj1610303..
111. Ortolani F., Giordano M., Marchini M. A model for type II collagen fibrils: distinctive D-band patterns in native and reconstituted fibrils compared with sequence data for helix and telopeptide domains. Biopolymers. 2000;54:448. DOI: 10.1002/1097-0282(200011)54:6<448::AID-BIP80>3.0.CO;2-Q.
112. Backlund J., Carlsen S., Hoger T. Predominant selection of T cells specific for the glycosylated collagen type II epitope (263-270) in humanized transgenic mice and in rheumatoid arthritis. Proc Natl Acad Sci. 2002;99:9960–9965. DOI: 10.1073/pnas.132254199.
113. Van Meegeren M., Roosendaal G., Jansen N. et al. IL-4 alone and in combination with IL-10 protects against blood-induced cartilage damage. Osteoarthritis Cartilage. 2012;20:764–772. DOI: 10.1016/j.joca.2012.04.002.
114. Muller R., John T., Kohl B. et al: IL-10 overexpression differentially affects cartilage matrix gene expression in response to TNF-alpha in human articular chondrocytes in vitro. Cytokine. 2008;44:377–385. DOI: 10.1016/j.cyto.2008.10.012.
115. Weiner H., da Cunha A., Quintana F. et al: Oral tolerance. Immunol Rev. 2011;241:241–259. DOI: 10.1111/j.1600-065X.2011.01017.x.
116. Gencoglu H., Orhan C., Sahin E., Sahin K. Undenatured Type II Collagen (UC-II) in Joint Health and Disease: A Review on the Current Knowledge of Companion Animals. Animals (Basel). 2020;10:697. DOI: 10.3390/ani10040697.
117. Bruyère O., Honvo G., Veronese N. et al. An updated algorithm recommendation for the management of knee osteoarthritis from the European Society for Clinical and Economic Aspects of Osteoporosis, Osteoarthritis and Musculoskeletal Diseases (ESCEO). Semin Arthritis Rheum. 2019;49(3):337–350. DOI: 10.1016/j.semarthrit.2019.04.008.
118. Singh J., Noorbaloochi S., MacDonald R., Maxwell L. Chondroitin for osteoarthritis. Cochrane Database Syst Rev. 2015;1(1):CD005614. DOI: 10.1002/14651858.CD005614.pub2.
119. Honvo G., Bruyere O., Geerinck A. et al. Efficacy of chondroitin sulfate in patients with knee osteoarthritis: a comprehensive meta-analysis exploring inconsistencies in randomized, placebo-controlled trials. Adv Ther. 2019;36(5):1085–1099. DOI: 10.1007/s12325-019-00921-w.
120. Reginster J., Dudler J., Blicharski T., Pavelka K. Pharmaceutical-grade Chondroitin sulfate is as effective as celecoxib and superior to placebo in symptomatic knee osteoarthritis: the ChONdroitin versus CElecoxib versus Placebo Trial (CONCEPT). Ann Rheum Dis. 2017;76(9):1537–1543. DOI: 10.1136/annrheumdis-2016-210860.
121. Pelletier J., Raynauld J., Beaulieu A. et al. Chondroitin sulfate efficacy versus celecoxib on knee osteoarthritis structural changes using magnetic resonance imaging: a 2-year multicentre exploratory study. Arthritis Res Ther. 2016;18(1):256. DOI: 10.1186/s13075-016-1149-0.
122. Kahan A., Uebelhart D., De Vathaire F. et al. Long-term effects of chondroitins 4 and 6 sulfate on knee osteoarthritis: the study on osteoarthritis progression prevention, a two-year, randomized, double-blind, placebo-controlled trial. Arthritis Rheum. 2009;60(2):524–533. DOI: 10.1002/art.24255.
123. Сарвилина И.В., Минасов Т.Б., Лила А.М. и др. Об эффективности парентеральной формы высокоочищенного хондроитина сульфата в режиме периоперационной подготовки к эндопротезированию коленных суставов. РМЖ. 2022;7:7–16. [Sarvilina I.V., Minasov T.B., Lila A.M. et al. On the efficacy of the parenteral form of highly purified chondroitin sulfate in the mode of perioperative preparation for total knee arthroplasty. RMJ. 2022;7:7–16 (in Russ.)].
124. Gregori D., Giacovelli G., Minto C. et al. Association of pharmacological treatments with long-term pain control in patients with knee osteoarthritis: a systematic review and meta-analysis. JAMA. 2018;320(24):2564–2579. DOI: 10.1001/jama.2018.19319.
125. Wandel P., Juni B., Tendal E. et al. Effects of glucosamine, chondroitin, or placebo in patients with osteoarthritis of hip or knee: network meta-analysis. BMJ. 2010;341:c4675. DOI: 10.1136/bmj.c4675.
126. Hathcock J., Shao A. Risk assessment for glucosamine and chondroitin sulfate. Regul Toxicol Pharmacol. 2007;47(1):78–83. DOI: 10.1016/j.yrtph.2006.07.004.
127. Алексеева Л.И., Аникин С.Г., Зайцева Е.М. и др. Исследование эффективности, переносимости и безопасности препарата Хондрогард у пациентов с остеоартрозом. РМЖ. 2013;32:1624. [Alekseeva L.I., Anikin S.G., Zaitseva E.M. Efficacy, tolerability and safety study of Chondrogard in patients with osteoarthritis. RMJ. 2013;32:1624 (in Russ.)].
128. Bruyere O., Burlet N., Delmas P. et al. Evaluation of Symptomatic Slow-Acting Drugs in Osteoarthritis Using the GRADE System. BMC Musculoskelet Dis. 2008;16(9):165. DOI: 10.1186/1471-2474-9-165.
129. Jordan K., Arden N., Doherty M. et al. EULAR Recommendation 2003: an evidence based approach to the management of knee osteoarthritis: Report of a Task Force of the Standing Committee for international Clinical Studies including Therapeutic Trials (ESCISIT). Ann Rheum Dis. 2003;62:1145–1155. DOI: 10.1136/ard.2003.011742.
130. Towbeed T., Maxwell L., Anastassiades T. et al. Glucosamine therapy for treating osteoarthritis. Cochrane Database Syst Rev. 2005;2:CD002946. DOI: 10.1002/14651858.CD002946.pub2.
131. Herrero-Beaumont G., Ivorra J.A., Del Carmen Irabado M. et al. Glucosamine sulfate in the treatment of knee osteoarthritis symptoms: a randomized, double-blind, placebo-controlled study using acetaminophen as side comparator. Arthritis Rheum. 2007;56:555–567. DOI: 10.1002/art.22371.
132. Pawelka K., Gatterova J., Olejarova M. et al. Glucosamine sulfate use and delay of progression of knee osteoarthritis: a 3 year, randomized, placebo-controlled, double-blind study. Arch Intern Med 2002;162:2113–2123. DOI: 10.1001/archinte.162.18.2113.
133. Schneider H., Maheu E., Cucherat M. Symptom-modifying effect of chondroitin sulfate in knee osteoarthritis: a meta-analysis of randomized placebo-controlled trials performed with structum(®). Open Rheumatol J. 2012;6:183–189. DOI: 10.2174/1874312901206010183.
134. Lugo J., Saiyed Z., Lane N. Efficacy and tolerability of an undenatured type II collagen supplement in modulating knee osteoarthritis symptoms: a multicenter randomized, double-blind, placebo-controlled study. Nutrition J. 2016;15:14. DOI: 10.1186/s12937-016-0130-8.
135. Mehra A., Anand P., Borate M. et al. A non-interventional, prospective, multicentric real life Indian study to assess safety and effectiveness of un-denatured type 2 collagen in management of osteoarthritis. Int J Res Orthop. 2019;5(2):315–320. DOI: 10.18203/issn.2455-4510.
136. Bakilan F., Armagan O., Ozgen M. et al. Effects of Native Type II Collagen Treatment on Knee Osteoarthritis: A Randomized Controlled Trial. Eur J Med. 2016;48:95–101. DOI: 10.5152/eurasianjmed.2015.15030.
137. Liu X., Machado G., Eyles J. et al. Dietary supplements for treating osteoarthritis: a systematic review and meta-analysis. Br J Sports Med. 2018;52:167–175. DOI: 10.1136/bjsports-2016-097333.
Лицензия Creative Commons
Контент доступен под лицензией Creative Commons «Attribution» («Атрибуция») 4.0 Всемирная.
Новости/Конференции
Все новости
Ближайшие конференции
Новости/Конференции
Все новости
Новости/Конференции
Все новости
Ближайшие конференции
Все мероприятия

Данный информационный сайт предназначен исключительно для медицинских, фармацевтических и иных работников системы здравоохранения.
Вся информация сайта www.rmj.ru (далее — Информация) может быть доступна исключительно для специалистов системы здравоохранения. В связи с этим для доступа к такой Информации от Вас требуется подтверждение Вашего статуса и факта наличия у Вас профессионального медицинского образования, а также того, что Вы являетесь действующим медицинским, фармацевтическим работником или иным соответствующим профессионалом, обладающим соответствующими знаниями и навыками в области медицины, фармацевтики, диагностики и здравоохранения РФ. Информация, содержащаяся на настоящем сайте, предназначена исключительно для ознакомления, носит научно-информационный характер и не должна расцениваться в качестве Информации рекламного характера для широкого круга лиц.

Информация не должна быть использована для замены непосредственной консультации с врачом и для принятия решения о применении продукции самостоятельно.

На основании вышесказанного, пожалуйста, подтвердите, что Вы являетесь действующим медицинским или фармацевтическим работником, либо иным работником системы здравоохранения.

Читать дальше